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兰花的繁殖方法与流程

花匠小妙招
2024-09-13 19:11

本发明涉及观赏花卉种植领域，尤其是涉及兰花的繁殖方法。

技术背景

兰花为附生或地生草本植物，叶数枚至多枚，通常生于假鳞茎基部或下部节上，二列，带状或罕有倒披针形至狭椭圆形，基部一般有宽阔的鞘并围抱假鳞茎，有关节。总状花序具数花或多花，颜色有白、纯白、白绿、黄绿、淡黄、淡黄褐、黄、红、青、紫。

中国传统名花中的兰花仅指分布在中国兰属植物中的若干种地生兰，如春兰、惠兰、建兰、墨兰和寒兰等，即通常所指的“中国兰”。这一类兰花与花大色艳的热带兰花大不相同，没有醒目的艳态，没有硕大的花、叶，却具有质朴文静、淡雅高洁的气质，很符合东方人的审美标准。在中国有一千余年的栽培历史。中国人历来把兰花看做是高洁典雅的象征，并与“梅、竹、菊”并列，合称“四君子”。通常以“兰章”喻诗文之美，以“兰交”喻友谊之真。也有借兰来表达纯洁的爱情，“气如兰兮长不改，心若兰兮终不移”、“寻得幽兰报知己，一枝聊赠梦潇湘”。1985年5月兰花被评为中国十大名花之四。

技术实现要素：

本发明的目的在于提供兰花的繁殖方法，本繁殖方法实施简单，可繁殖兰花的品种繁多，而且经诱导、增殖、分化后获得的兰花幼苗幼苗根系发达，成活率高，兰花幼苗可迅速成活成长，植株健壮，长势旺盛。

本发明针对

背景技术：
中提到的问题，采取的技术方案为：兰花的繁殖方法，包括：预处理、诱导培养、继代增殖培养、分化培养、移栽，具体包括以下步骤：

预处理：选取3-4月新抽出来的兰花新芽，长度为10-13cm，用中性洗涤剂漂洗3-5分钟，再用流水冲洗15-20分钟，然后用85-95%酒精灭菌12-15秒，无菌水冲洗3-5遍，再用0.1-0.13%氯化汞溶液灭菌9-12分钟，无菌水冲洗3-5遍，在解剖镜下，无菌剥取茎尖；外植体灭菌可以灭杀兰花茎尖部位携带的有害微生物，避免将有害微生物引入培养基质中造成污染，同时也可以避免微生物对培养基质的吸收利用，为茎尖细胞提供充足的营养成分供其分化；

诱导培养：配制诱导培养基为：琼脂1.5-3.0g/l、蔗糖3.0-4.0g/l、椰子汁80-100g/l、叶酸1-1.2mg/l、萘乙酸2-2.5mg/l，以玻璃棒插成1-1.5cm深小孔，在每个小孔中垂直插入1-2片茎尖小块，均匀撒置2-4mm厚的粉状活性炭，在温度为25-28℃、光照时间为8-10小时、光照强度为1500-2000lux的培养条件下培养28-32天即得丛生芽；活性炭有助于调节基质的容重、总孔隙度、通气孔隙、持水孔隙和气水比，同时活性炭还有助于降低茎尖的褐化率，在添加活性炭的培养基质上较容易诱导愈伤组织，愈伤诱导率达99%以上，经诱导培养，兰花茎尖可萌发成丛生芽，丛生芽结构完整，可直接形成小植株，也可继代增殖分化培养，其形成过程不经过两性细胞的结合，不发生基因重组，故可保持亲代优良的性状；

继代增殖培养：配制继代增殖培养基为：琼脂5-6g/l、蔗糖15-20g/l、蜂蜜20-22g/l、维生素b10.1-0.15g/l、叶酸0.5-0.6mg/l、6-苄氨基腺嘌呤3-5mg/l、吲哚乙酸6-8mg/l、（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇0.2-0.3mg/l，椰子汁50-80g/l，将每个丛生芽切割分成3-5份并移至继代增殖培养基中，在温度为25-28℃、光照时间为8-10小时、光照强度为2000-2500lux的培养条件下培养；6-苄氨基腺嘌呤、吲哚乙酸能够作用于细胞，可刺激形成层细胞分裂，促进木质部、韧皮部细胞分化，促进逾伤组织分化、调节愈伤组织的形态建成，（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇能够与吲哚乙酸发生络合反应，从而可以防止吲哚乙酸被光氧化为吲哚而失去调节作用，络合物可以作为植物体内吲哚乙酸的一种储存形式，在适当条件下，络合物可以经由解络合反应而转变为游离型，经运输转移到作用部位起作用；

分化培养：增值率为4-6倍即可选择较大的芽移至分化培养基中进行诱根分化培养，分化培养基为：琼脂10-12g/l、蔗糖30-45g/l、蜂蜜25-30g/l、维生素b10.2-0.5g/l、维生素b50.3-0.5g/l、萘乙酸0.5-1.0mg/l、椰子汁80-120g/l，分化培养温度为22-24℃、光照时间为12-14小时、光强为2800-3200lux，分化培养34-40天即可生根并可移栽；分化培养可刺激形成层细胞分裂，刺激根细胞生长，促进逾伤组织发根，促进木质部、韧皮部细胞分化，幼苗根系发达，成活率高；

移栽：在温度为28-30℃、光强为5000-10000lux的条件下炼苗7-10天，洗净附着在根上的培养基，晾苗后栽植在水苔中，在高湿、弱光条件下缓苗6-10天，用多菌灵可湿性粉剂2000-3000倍液与3000-4000倍高锰酸钾稀释溶液消毒1-2分钟，取出在阴凉处晾10-15分钟后移栽到栽培基质中即可；通过炼苗并消毒后，幼苗可以迅速适应栽培基质的土质环境，可以缩短缓苗时间，增强对低温、大风等的抵抗能力，使兰花幼苗迅速成活成长，植株健壮，长势旺盛，完成组培阶段。

与现有技术相比，本发明的优点在于：1）活性炭有助于调节基质的容重、总孔隙度、通气孔隙、持水孔隙和气水比，同时活性炭还有助于降低茎尖的褐化率，在添加活性炭的培养基质上较容易诱导愈伤组织，愈伤诱导率达99%以上；2）（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇能够与吲哚乙酸发生络合反应，从而可以防止吲哚乙酸被光氧化为吲哚而失去调节作用，络合物可以作为植物体内吲哚乙酸的一种储存形式，在适当条件下，络合物可以经由解络合反应而转变为游离型，经运输转移到作用部位起作用。

具体实施方式

下面通过实施例对本发明方案作进一步说明：

实施例1：

兰花的繁殖方法，包括以下步骤：

1）选取3月新抽出来的兰花新芽，长度为10cm，用中性洗涤剂漂洗3分钟，再用流水冲洗15分钟，然后用85%酒精灭菌12秒，无菌水冲洗3遍，再用0.1%氯化汞溶液灭菌9分钟，无菌水冲洗3次，在解剖镜下，无菌剥取茎尖；2）以玻璃棒在诱导培养基中插1cm深小孔，在每个小孔中垂直插入1片茎尖小块，均匀撒置2mm厚的粉状活性炭，在温度为25℃、光照时间为8小时、光照强度为1500lux的培养条件下培养28天即得丛生芽；3）将每个丛生芽切割分成3份并移至继代增殖培养基中，在温度为25℃、光照时间为8小时、光照强度为2000lux的培养条件下培养；4）增值率为4倍即可选择较大的芽移至分化培养基中进行诱根分化培养，分化培养温度为22℃、光照时间为12小时、光强为2800lux，分化培养34天即可生根并可移栽；5）在温度为28℃、光强为5000lux的条件下炼苗7天，洗净附着在根上的培养基，晾苗后栽植在水苔中，在高湿、弱光条件下缓苗6天，用多菌灵可湿性粉剂2000倍液与3000倍高锰酸钾稀释溶液消毒1分钟，取出在阴凉处晾10分钟后移栽到栽培基质中即可。

实施例2：

兰花的繁殖方法，包括以下步骤：

1）预处理：选取4月新抽出来的兰花新芽，长度为13cm，用中性洗涤剂漂洗5分钟，再用流水冲洗20分钟，然后用95%酒精灭菌15秒，无菌水冲洗5遍，再用0.13%氯化汞溶液灭菌12分钟，无菌水冲洗5次，在解剖镜下，无菌剥取茎尖；外植体灭菌可以灭杀兰花茎尖部位携带的有害微生物，避免将有害微生物引入培养基质中造成污染，同时也可以避免微生物对培养基质的吸收利用，为茎尖细胞提供充足的营养成分供其分化；

2）诱导培养：以玻璃棒在诱导培养基上插成1.5cm深小孔，在每个小孔中垂直插入2片茎尖小块，均匀撒置4mm厚的粉状活性炭，在温度为28℃、光照时间为10小时、光照强度为2000lux的培养条件下培养32天即得丛生芽；活性炭有助于调节基质的容重、总孔隙度、通气孔隙、持水孔隙和气水比，同时活性炭还有助于降低茎尖的褐化率，在添加活性炭的培养基质上较容易诱导愈伤组织，愈伤诱导率达99%以上，经诱导培养，兰花茎尖可萌发成丛生芽，丛生芽结构完整，可直接形成小植株，也可继代增殖分化培养，其形成过程不经过两性细胞的结合，不发生基因重组，故可保持亲代优良的性状；

3）继代增殖培养：配制继代增殖培养基为：琼脂6g/l、蔗糖20g/l、蜂蜜22g/l、维生素b10.15g/l、叶酸0.6mg/l、6-苄氨基腺嘌呤5mg/l、吲哚乙酸8mg/l、（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇0.3mg/l，椰子汁80g/l，将每个丛生芽切割分成3-5份并移至继代增殖培养基中，在温度为28℃、光照时间为10小时、光照强度为2500lux的培养条件下培养；6-苄氨基腺嘌呤、吲哚乙酸能够作用于细胞，可刺激形成层细胞分裂，促进木质部、韧皮部细胞分化，促进逾伤组织分化、调节愈伤组织的形态建成，（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇能够与吲哚乙酸发生络合反应，从而可以防止吲哚乙酸被光氧化为吲哚而失去调节作用，络合物可以作为植物体内吲哚乙酸的一种储存形式，在适当条件下，络合物可以经由解络合反应而转变为游离型，经运输转移到作用部位起作用；

4）分化培养：增值率为6倍即可选择较大的芽移至分化培养基中进行诱根分化培养，分化培养温度为24℃、光照时间为14小时、光强为3200lux，分化培养40天即可生根并可移栽；分化培养可刺激形成层细胞分裂，刺激根细胞生长，促进逾伤组织发根，促进木质部、韧皮部细胞分化，幼苗根系发达，成活率高；

5）移栽：在温度为30℃、光强为10000lux的条件下炼苗10天，洗净附着在根上的培养基，晾苗后栽植在水苔中，在高湿、弱光条件下缓苗10天，用多菌灵可湿性粉剂3000倍液与4000倍高锰酸钾稀释溶液消毒2分钟，取出在阴凉处晾15分钟后移栽到栽培基质中即可；通过炼苗并消毒后，幼苗可以迅速适应栽培基质的土质环境，可以缩短缓苗时间，增强对低温、大风等的抵抗能力，使兰花幼苗迅速成活成长，植株健壮，长势旺盛，完成组培阶段。

实施例3：

兰花的繁殖方法，包括：预处理、诱导培养、继代增殖培养、分化培养、移栽，具体包括以下步骤：

预处理：选取3-4月新抽出来的兰花新芽，长度为12cm，用中性洗涤剂漂洗4分钟，再用流水冲洗15分钟，然后用90%酒精灭菌12秒，无菌水冲洗4遍，再用0.12%氯化汞溶液灭菌10分钟，无菌水冲洗4次，在解剖镜下，无菌剥取茎尖；外植体灭菌可以灭杀兰花茎尖部位携带的有害微生物，避免将有害微生物引入培养基质中造成污染，同时也可以避免微生物对培养基质的吸收利用，为茎尖细胞提供充足的营养成分供其分化；

诱导培养：配制诱导培养基为：琼脂2g/l、蔗糖3.5g/l、椰子汁100g/l、叶酸1.2mg/l、萘乙酸2.2mg/l，以玻璃棒插成1.2cm深小孔，在每个小孔中垂直插入2片茎尖小块，均匀撒置3mm厚的粉状活性炭，在温度为26℃、光照时间为10小时、光照强度为1800lux的培养条件下培养30天即得丛生芽；活性炭有助于调节基质的容重、总孔隙度、通气孔隙、持水孔隙和气水比，同时活性炭还有助于降低茎尖的褐化率，在添加活性炭的培养基质上较容易诱导愈伤组织，愈伤诱导率达99%以上，经诱导培养，兰花茎尖可萌发成丛生芽，丛生芽结构完整，可直接形成小植株，也可继代增殖分化培养，其形成过程不经过两性细胞的结合，不发生基因重组，故可保持亲代优良的性状；

继代增殖培养：配制继代增殖培养基为：琼脂6g/l、蔗糖18g/l、蜂蜜20g/l、维生素b10.1g/l、叶酸0.5mg/l、6-苄氨基腺嘌呤4mg/l、吲哚乙酸7mg/l、（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇0.21mg/l，椰子汁75g/l，将每个丛生芽切割分成4份并移至继代增殖培养基中，在温度为25℃、光照时间为9小时、光照强度为2400lux的培养条件下培养；6-苄氨基腺嘌呤、吲哚乙酸能够作用于细胞，可刺激形成层细胞分裂，促进木质部、韧皮部细胞分化，促进逾伤组织分化、调节愈伤组织的形态建成，（r）-（-）-2,2-二苯基环戊醇能够与吲哚乙酸发生络合反应，从而可以防止吲哚乙酸被光氧化为吲哚而失去调节作用，络合物可以作为植物体内吲哚乙酸的一种储存形式，在适当条件下，络合物可以经由解络合反应而转变为游离型，经运输转移到作用部位起作用；

分化培养：增值率为5倍即可选择较大的芽移至分化培养基中进行诱根分化培养，分化培养基为：琼脂10g/l、蔗糖40g/l、蜂蜜25g/l、维生素b10.4g/l、维生素b50.4g/l、萘乙酸0.8mg/l、椰子汁100g/l，分化培养温度为22℃、光照时间为12小时、光强为3000lux，分化培养35天即可生根并可移栽；分化培养可刺激形成层细胞分裂，刺激根细胞生长，促进逾伤组织发根，促进木质部、韧皮部细胞分化，幼苗根系发达，成活率高；

移栽：在温度为28℃、光强为8000lux的条件下炼苗7天，洗净附着在根上的培养基，晾苗后栽植在水苔中，在高湿、弱光条件下缓苗7天，用多菌灵可湿性粉剂2800倍液与3500倍高锰酸钾稀释溶液消毒1分钟，取出在阴凉处晾10分钟后移栽到栽培基质中即可；通过炼苗并消毒后，幼苗可以迅速适应栽培基质的土质环境，可以缩短缓苗时间，增强对低温、大风等的抵抗能力，使兰花幼苗迅速成活成长，植株健壮，长势旺盛，完成组培阶段。

本发明操作步骤中的常规操作为本领域技术人员所熟知，在此不进行赘述。

以上所述的实施例对本发明的技术方案进行了详细说明，应理解的是以上所述仅为本发明的具体实施例，并不用于限制本发明，凡在本发明的原则范围内所做的任何修改、补充或类似方式替代等，均应包含在本发明的保护范围之内。