专利名称:一种调控百合花期的方法
一种调控百合花期的方法技术领域
本发明属于利用基因工程改造植物生理周期方法的领域,特别涉及一种调控百 合花期的方法。
技术背景植物花期是观赏园艺植物的一个重要特征。植物的花期决定了植物的应用范围和商 业价值。植物开花是植物由营养生长向生殖生长转型的最重要的一个过程,在合适的时 间完成这个转型是植物实现生殖发育所必需的。通过对开花时间的调控,植物才能实现 种间同步杂交并产生尽可能多的种子,这是植物在长期进化过程中形成的对环境条件的 一种适应。最近十余年来,利用拟南芥为模式植物,对高等植物开花时间调控机理与信 号转导途径的研究取得了长足的进步。
目前模式植物拟南芥的开花途径已经研究得比较清楚,由四条途径控制光周 其月途径(photoperiod pathway)、自主途径(autonomous pathway)、春化途径(vernalization pathway)和赤霉素途径(GApathway)。光周期途径的关键基因有光受体⑶F/、CRY2, phya琳phyb等,生物钟基因有ZI、CCAl、TOCl、GI、COSTANS等,低温春化途 径关键基因有W A^、和等基因,自主途径有/CL4、FY、和FZD等 关键基因。低温春化途径基因和自主途径基因共同抑制开花抑制因子^ZC基因的表达。 以上这三条途径共同调节开花整合子/T和5OC7的活性,后者进而影响花分生组织基因 APl和ZfF的表达;赤霉素途径则通过赤霉素合成酶基因和赤霉素不敏感基因等直接影 响5OC7和的表达。这些开花调控途径既相对独立,又相互影响,共同调控植物花 的诱导和发育。
在实际生产应用中,大多针对不同的植物类型采用不同的花期调控模式,如菊 花多采取人工短日照处理的方法,还有些花卉采用激素处理来促进成花。在处理过程 中还需要植物生长到特定阶段,保持特定的温度和湿度,只有这样才能促进植物良好开 花,催花成本比较高。
因此,在实际生产中,需要一种无需激素处理、转化处理过程简单易行、处理 后植株养护方便、催花成本低廉的调控花期的方法
发明内容
本发明提供一种调控百合花期的方法,该方法是利用病毒表达载体将拟南芥的 /了基因(Genbank中登陆号为NM105222.2)导入百合中。
本发明的目的是由以下技术方案实现的一种调控百合花期的方法,该方法是利用病毒表达载体将拟南芥/T基因(Genbank 中登陆号为NM105222.2)导入百合中。
所述的百合的品种为新铁炮富田1号。
所述的病毒表达载体导入农杆菌,得到带有所述的病毒表达载体的农杆菌;再将所述的带有病毒表达载体的农杆菌注射入百合小苗的叶片中。
所述的病毒表达载体由质粒载体PGR106构建而成。
所述的病毒表达载体中含有eGFP基因。
所述的导入方法为电击转化法。
所述的农杆菌的菌种为GV3101。
本发明相比现有技术具有以下有益效果本发明是向百合中转入/T基因,充分利用/T是成花素,可以长途运输这一特性, 利用FT蛋白促进百合成花;目前的研究结果已经表明植物开花受到成花素的诱导,成花 素就是FT及其同源基因所编码的蛋白质,可以长途运输,由产生部位运输到靶标部位最 终促进成花。
本发明在处理中没有对植株使用激素,也未涉及到转基因植物,所以没有造成 化学药品所带来的环境污染。
本法明的处理过程简单易行、处理后植株养护方便、催化成本低廉。
说明书附1 拟南芥/T基因PCR检测结果; 图2 病毒表达载体pGR106-/T结构图;图3 病毒表达载体pGR106-/了在百合叶片中表达的荧光显微镜检测结果; 图4 病毒表达载体pGR106-/TPCR检测结果; 图5 病毒表达载体pGR106-/T对百合花期的影响。
具体实施方式
实施例1 一种调控百合花期的方法,该方法是利用病毒表达载体将拟南芥/T基因(Genbank 中登陆号为NM105222.2)导入百合中。
所述的百合的品种为新铁炮富田1号,也可以为其他常见百合品种。
所述的病毒表达载体导入农杆菌,得到带有所述的病毒表达载体的农杆菌;再 将所述的带有病毒表达载体的农杆菌注射入百合小苗的叶片中。
所述的病毒表达载体由质粒载体pGR106构建而成。
所述的病毒表达载体中含有eGFP基因。
所述的导入方法为电击转化法。
所述的农杆菌的菌种为GV3101。
本实施例是向百合中转入/T基因,是充分利用FT是成花素,可以长途运输这 一特性,利用FT蛋白促进百合成花;目前的研究结果已经表明植物开花受到成花素的诱 导,成花素就是FT及其同源基因所编码的蛋白质,可以长途运输,由产生部位运输到靶 标部位最终促进成花;已经有的研究试验表明/了基因经过PVX病毒携带并在植物中表 达可以促进烟草成花。
本实施例在处理中没有对植株使用激素,所以没有造成化学药品所带来的环境 污染。
本实施例的处理过程简单易行、处理后植株养护方便、催花成本低廉。4
实施例2 本实施例为病毒表达载体pGR106-/T的构建。
本实施例中的基础材料为FT eGFP基因存在于质粒载体PCR2.1中,该 载体的制备方法记载于《FLOWERING LOCUS T Protein May Act as the Long-Distance Florigenic Signal in the Cucurbits》 (William J. Lucas, Section of Plant Biology, College of Biological Sciences, University of California, Davis, California, The Plant Cell 19:1488-1506 (2007)),该载体带有拟南芥/T基因(Genbank中登陆号为NM105222.2)和eGfiP基 因;所述的构建步骤如下A、克隆目的基因并引入酶切位点在质粒载体PCR2.1中,利用克隆拟南芥FT基因的引物序列(Genbank中登陆号为 NM105222.2),将上下游引物的酶切位点分别换为Clal、Sail,且在下游引物序列中加 入终止密码子UAG,再进行PCR扩增获得带有酶切位点Clal、Sail的/Τ.· eGFP基因。
/Τ.· eGfiP基因具体引物序列如下 上游引物FT_up2为5,CCG ATCGAT ATG CGG GCC TCT ΑΤΑ AAT3, (含 ClaI 酶切位点) 下游引物FT_down2为5,CA GTCGAC CTA GGT ACC GGA TCC CTT GT3,(含 SalI 酶切位点) PCR反应体系PCR反应的程序设定如下第一步94 °C,4 min ;第二步94 °C,45 s ;第三步60.2 V,1 min ;第四步 72 "C,Imin ;第五步72 °C,7 min ; 其中,第二、三、四步重复20个循环;PCR扩增,25 μ 1 PCR反应体系如下在200 μ 1的小离心管中依次加入下列成分质粒模板DNA 1 μ 1 ;Buffer 2.5 μ 1 ;dNTP 2 μ 1 ;上游引物1 μ ;下游引物1 μ ;rTaq 聚合酶0.2 μ ;ddH20 17.3 μ 。
将PCR产物回收后测序,再经序列分析,证明PCR扩增产物确为带有酶切位点 Clal、Sail 的/T: eGFP 基因。
PCR 结果如图 1 所示,M Marker ; 1-2 FT-eGFP 的 PCR 扩增条带;B、构建病毒表达载体pGR106-FT a、酶切将上述带有酶切位点Clal、Sail的FT eGFP基因和pGR106载体质粒,进行Clal、Sail双酶切,再分别回收1.3kb和ll.lkb处的DNA片段。其中,1.3kb处的DNA片段为 FT eGFP基因片段,ll.lkb处的DNA片段为pGR106载体片段。
b、连接将上述回收的FT: eGFP基因片段与pGR106载体片段按3: 1的比例进行连接处 理,温度为16°C,时间为Mh,得到连接产物。
DNA连接反应如下 IOXligation buffer 1 μ 1 ; PGR106载体片段2 μ 1 ; FT eGFP基因片段6μ1 ; Τ4 DNA Iigase 1 μ 1 ; Total volume 10 μ 1 ;10 X Τ4 DNA Ligase buffer Tris-HCL 400mM, MgCL2 IOOmM, DTT IOOmM ,ATP 5mM , (PH7.5,25°C)。
将所述的连接产物经过热击转化,导入大肠杆菌DH5CI感受态细胞中,提质 粒,经酶切验证正确的载体质粒,送往上海生工测序并验证正确,得到构建好的病毒表 达载体pGR106-FT。所述的病毒表达载体pGR106-FT的结构如图2所示。
实施例3 本实施例为所述的病毒表达载体pGR106-FT电击转化导入农杆菌GV3101。
A、农杆菌电击转化感受态细胞的制备a.将-80°C保存的农杆菌GV3101菌液取出解冻,划线接种于LB (含Rif 50yg · ml—1+四环素2yg · ml—1)固体培养基上;b.挑取单菌落接种于3ml液体LB液体培养基(含Rif 50 μ g · ml—1+四环素2 μ g · ml ,在摇床上培养过夜,转速为180rpm,温度为28 V,得到培养过夜的菌液;c.取两个三角瓶,分别盛有100mlLB液体培养基(不加抗生素),再分别加入0.5 Iml所述的培养过夜的菌液,在摇床上培养,转速为ISOrpm,温度为^°C,时间为3 4h,达到OD600=0.5 1,优选为0.6,得到扩增后的菌液;d.将所述的扩增后的菌液分别装于6个离心管中(30ml/管),进行离心处理,温 度为4°C,转速为4000 rpm,时间为5min;再弃上清液,并倒置离心管1 min,将余液排 尽,得到沉淀物A ;e.将所述的沉淀物A中加入1/2体积的10%的预冷甘油,或者是等体积的ddH20重 悬,再进行离心处理,温度为4°C,转速为4000 rpm,时间为5min ;f.再弃上清液,得到沉淀物B;将所述的沉淀物B每管用4ml 10 %预冷甘油或者是 等体积的ddH20重悬,并合装于两只离心管中,再进行离心处理,温度为4°C,转速为 4000 rpm,时间为 5min ;g.再弃上清液,得到沉淀物C;将所述的沉淀物C每管用2ml10%预冷甘油或者是 等体积的ddH20重悬,并合装于一只离心管中,再进行离心处理,温度为4°C,转速为 4000 rpm,时间为 5min ;h.再弃上清液,得到沉淀物D,用1.5ml 10%甘油重悬,得到农杆菌感受态细胞;i.将所述的感受态菌液分装,每管100μ 1,在液氮中速冻,保存在-80°C。
B、质粒转化农杆菌的电击转化将所述的病毒表达载体pGR106-/T转入农杆菌GV3101。
a.从-80°c冰箱中取出所述的农杆菌感受态细胞,置于冰上慢慢溶解。
b.将1 5 μ 1所述的病毒表达载体pGR106_/了加入到40 μ 1所述的农杆菌感受 态细胞中,用手指轻轻弹混勻,得到用于电击的菌液;c.将所述的用于电击的菌液转移到冰上预冷的电极杯中,将电极杯放到冰上;d.将电极器设定电压2.5kV,电阻400 ohm,电容25 Mfd ;e.将电极槽从冰上取出,擦干然后按照正确的方向放入,插到最里面,然后同时按 “Bit-Rad”和“genepluse”两个按钮,并一直按到机器发出响声立即放手,时间表显示8 12 msec为合适;f.立即往电极槽里加入1ml LB培养基;g.将电极槽中溶液混勻,然后转移到1.5ml的离心管中,进行培养,温度为28 V, 转速为200rpm,时间为45 min,得到电击后的菌液;h.将所述的电击后的菌液离心,弃上清,用枪混勻,涂于四抗平板(Kan50 Ug · mr'+RifSO yg · ml-1+四环素 2yg · ιηΓ1+庆大霉素 40 μ g · ιηΓ1 ),再于 28 °C,培养48h,得到含有病毒表达载体pGR106-/T的农杆菌的菌落。
实施例4 本实施例为病毒表达载体pGR106-FT注射百合。
A、百合幼苗的种植选择吸水性好,土质松软的蛭石和营养土,按重量比2: 1混合,于140°C,高温灭 菌4h,得到百合培养土;再将所述的百合培养土分装到8X16孔穴盘中,每孔播种一粒 百合种子;播种以后在穴盘上罩上薄膜,给植株的生长提供一个湿润的环境;等百合小 苗长到1 2片叶子时,移入营养钵每钵一株,置于室温内培养。
B、菌液制备a.在实施例3中所述的含有病毒表达载体pGR106-/T的农杆菌的菌落中,挑取单菌 落,于 5 IOml 含卡那霉素 Kan 50 yg · ml _1+Rif50 yg · ml-1+四环素 2yg · ιηΓ1+ 庆大霉素40 μ g · ml 1的LB液体培养基中进行培养,温度为28 °C,转速为200 rpm, 时间为18 h,得到四抗菌液;再将所述的四抗菌液按照体积比1 50 100的转接到含 有相同抗生素的LB里面进行培养,温度为28 V,转速为200 rpm,直至OD6OO为0.4 1.0,优选为0.6,得到悬浮菌液A ;b.将所述的悬浮菌液A进行离心处理,转速为5000rpm,时间为15 min,温度为室 温,弃上清,收集沉淀物;将所述的沉淀物用5 ml渗透培养液(l/2MS+30g/L蔗糖)重 悬,然后加上渗透培养液,使OD600至0.4 1.0,优选为0.6,得到用于转化的悬浮液; 所述的渗透培养液配方(IL) l/2MS+30g蔗糖;C、注射百合待到百合小苗长到6 8cm高时,用注射器(无针头)将所述的用于转化的悬浮菌 液从叶片背面远离主脉处注入1 2ml,注射无菌水为对照;再将注射后的百合小苗置于 温室内,定期观察注射过百合苗的变化。
实施例5 本实施例为转入病毒表达载体PGR106-/T的百合的检测。
、PGR106-/T病毒表达载体在百合叶片中的表达
用实施例4中所述的用于转化的悬浮液注射百合叶片后,用注射无菌水的百合叶片 作为对照,在荧光显微镜下观察/T-eG^融合基因的表达情况。如图3所示,可以看到 对照叶片无绿色荧光;而注射过的百合叶片中,有绿色荧光,并且植株下、中、上部位 叶片的荧光表达量依次减少。图3中,A:在荧光下,无菌水注射过的百合叶片(对照);B:在荧光 下,病毒表达载体PGR106-/T注射过的百合下部叶片;C:在荧光下,病毒表达载体 PGR106-/T注射过的百合中部叶片;D:在荧光下,病毒表达载体PGR106-/T注射过的 百合上部叶片。、病毒表达载体PGR106-/T的PCR检测
PCR产物琼脂凝胶电泳结果如图4所示,注射病毒表达载体PGR106-/T植株有 大小为560bp的目的基因片段,与病毒表达载体PGR106-/T中目的基因片段大小相符。图4中M Marker ; 1 阳性对照;2 阴性对照;3 水空白对照;4_6 注
射植株。C、病毒表达载体PGR106-/T对百合花期的影响
用实施例4中所述的用于转化的悬浮液注射百合叶片后,将百合置于25°C温室生 长,培养温度为25-28°C,光照强度为30001ux。2个月以后,可以看到用含pgR106_/T 的菌悬浮液注射过的百合开花了;而对照株还未抽茎,如图5所示。图5中,1 空白对照;2-3 注射了病毒表达载体植株;4 注射无 菌水
综上所述,实施例4中所述的用于转化的悬浮液,用注射无菌水的百合叶片作为对 照,在荧光显微镜下观察/T-eG^融合基因的表达情况。可以看到对照叶片无绿色荧光 出现,而注射的植株有绿色荧光,并且其下、中、上部叶片荧光表达量逐渐 减少,2个月以后,已注射百合的花期明显比对照植株提前。实施例1至实施例5中,主要分子生物学试剂DNA凝胶回收试剂盒购自杭州 V-gene生物技术公司;DNA限制性内切酶、T4DNA连接酶、Ex Taq酶、购自宝生物大 连有限公司(TakaRa产品);
实施例1至实施例5中,PCR引物由北京三博远志生物技术有限公司合成;DNA测 序工作由上海生工生物工程技术服务有限公司完成。实施例1至实施例5中,所述的PCR反应使用PTC-100 Peltier Thermal Cycler基因扩增仪,购自MJ Research Inc公司;所述的琼脂糖凝胶电泳使用UVP Gel Documentation凝胶分析系统,购自基因公司;所述的琼脂糖凝胶电泳使用DYCP-31DN 电泳仪,购自北京六一仪器公司。实施例1至实施例5中,所采用的PCR、酶切、连接、转化等基因工程基本操 作方法记载于《分子克隆实验指南第三版》中((美〕J.萨姆布鲁克等著,科学出版 社,2002年出版),和《植物基因工程原理与技术》中(王关林,方宏筠著,科学出版 社,1998)。
权利要求
1.一种调控百合花期的方法,其特征在于该方法是利用病毒表达载体将拟南芥/T 基因(Genbank中登陆号为NM105222.2)导入百合中。
2.根据权利要求1所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的百合的品种为 新铁炮富田1号。
3.根据权利要求1或2所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的病毒表达载 体导入农杆菌,得到带有所述的病毒表达载体的农杆菌;再将所述的带有病毒表达载体 的农杆菌注射入百合小苗的叶片中。
4.根据权利要求3所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的病毒表达载体 由质粒载体pGR106构建而成。
5.根据权利要求3所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的病毒表达载体 中含有eGfiP基因。
6.根据权利要求3所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的导入方法为电 击转化法。
7.根据权利要求3所述的调控百合花期的方法,其特征在于所述的农杆菌的菌种 为 GV3101。
全文摘要
本发明提供一种调控百合花期的方法,该方法是利用病毒表达载体将拟南芥的FT基因(Genbank中登陆号为NM105222.2)导入百合中;所述的百合的品种为新铁炮富田1号。所述的病毒表达载体由电击转化法导入农杆菌,得到带有所述的病毒表达载体的农杆菌;再将所述的带有病毒表达载体的农杆菌注射入百合小苗的叶片中。所述的病毒表达载体由质粒载体pGR106构建而成。所述的农杆菌的菌种为GV3101。本发明的利用FT蛋白可以长途运输的性质,由产生部位运输到靶标部位最终促进成花;本发明在处理中没有对植株使用激素,也未涉及到转基因植物,所以没有造成化学药品所带来的环境污染;本发明的处理过程简单易行、处理后植株养护方便、催化成本低廉。
文档编号A01H5/00GK102021199SQ20101026356
公开日2011年4月20日 申请日期2010年8月26日 优先权日2010年8月26日
发明者任霞, 吴忠义, 张秀海, 李双, 黄丛林 申请人:北京农业生物技术研究中心
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