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一种硬叶兰组织培养繁育方法.pdf

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1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 (10)授权公告号 (45)授权公告日 (21)申请号 201510781057.4 (22)申请日 2015.11.13 (65)同一申请的已公布的文献号 申请公布号 CN 105284623 A (43)申请公布日 2016.02.03 (73)专利权人 广西壮族自治区药用植物园 地址 530023 广西壮族自治区南宁市兴宁 区长堽路189号 (72)发明人 王晓峰 李刚 缪剑华 韦坤华 李翠 李林轩 王一诺 (74)专利代理机构 广西南宁公平知识产权代理 有限公司 45104 代理人 黄永校 (51)Int.Cl. A01H 4/0。

2、0(2006.01) 审查员 陈仕高 (54)发明名称 一种硬叶兰组织培养繁育方法 (57)摘要 一种硬叶兰组织培养繁育方法, 包括如下步 骤: (1)取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外 植体进行消毒; (2)将消毒后的外植体置于MS基 本培养基中诱导得到无菌试管苗; (3)将所述无 菌试管苗置于MS繁殖培养基中进行试管苗快速 繁殖培养获得丛生芽。 采用本发明所述的培养方 法得到的硬叶兰丛生芽增殖系数达到20-30倍, 能够在短时间内提供健壮的硬叶兰优质种苗, 有 效解决硬叶兰规模化育苗的问题。 权利要求书1页 说明书3页 CN 105284623 B 2017.10.20 CN 105284。

3、623 B 1.一种硬叶兰Cymbidium bicolor Lindl.组织培养繁育方法, 其特征在于: 该方法包 括以下步骤: (1) 外植体的选择与消毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层包叶 后, 依次用2 % v/v洗洁精水溶液浸泡5min、 线状自来水冲洗15-30min、 添加了2-3滴吐温- 20的100毫升0.1 % v/v升汞消毒8-10min、 无菌水冲洗3-5次, 最后用消毒滤纸除去表面水 分, 得到外植体, 其中无菌水为经高温高压灭菌的蒸馏水; (2) 初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤 (1) 得到的外植体剥取0.2-0.3mm的茎尖分生组 织, 接。

4、种到MS诱导培养基中, 在培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小 时/天的条件下培养60天得到无菌试管苗, 其中MS诱导培养基中添加0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8; (3) 丛生芽快速繁殖培养: 将步骤 (2) 中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基中, 在 培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得到丛 生芽, 其中1/3MS繁殖培养基中添加2.0-5.0mg/L的6-BA、 0.2-0.6mg/L。

5、NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8。 权 利 要 求 书 1/1 页 2 CN 105284623 B 2 一种硬叶兰组织培养繁育方法 技术领域 0001 本发明涉及一种植物繁殖方法, 特别是一种硬叶兰组织培养繁育方法。 背景技术 0002 硬叶兰(Cymbidium bicolor Lindl.)为兰科药用植物, 全草入药, 具有散瘀止血、 清热润肺、 化痰止咳等功效。 此外, 硬叶兰还极具观赏价值。 但硬叶兰的种子非常细小, 仅有 发育不完全的胚, 本身无法储存养分, 自然条件下, 其种子萌发阶段完全依靠菌根真菌为其 提供养分, 自。

6、然繁殖率低, 时间长。 因此, 野生硬叶兰非常稀少, 由于长期过度采掘及生态环 境的破坏, 硬叶兰已处于濒危状态, 种子种苗稀缺, 资源更新非常困难。 发明内容 0003 本发明的目的是提供一种硬叶兰组织培养繁育方法, 能够快速有效地提高硬叶兰 种苗的繁殖速度和质量, 实现硬叶兰优质种苗的工厂化育苗, 以满足生产上的需要。 0004 本发明通过以下技术方案达到上述目的: 一种硬叶兰组织培养繁育方法, 包括以 下步骤: 0005 (1)外植体的选择与消毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层 包叶后, 依次用2v/v洗洁精水溶液浸泡5min、 线状自来水冲洗15-30min、 添。

7、加了2-3滴吐 温-20的100毫升0.1v/v升汞消毒8-10min、 无菌水冲洗3-5次, 最后用消毒滤纸除去表面 水分, 得到外植体, 其中无菌水为经高温高压灭菌的蒸馏水; 0006 (2)初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤(1)得到的外植体剥去0.2-0.3mm的茎尖分 生组织, 接种到MS诱导培养基中, 在培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8- 10小时/天的条件下培养60天得到无菌试管苗, 其中MS诱导培养基中添加0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8; 000。

8、7 (3)丛生芽快速繁殖培养: 将步骤(2)中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基 中, 在培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天 得到丛生芽, 其中1/3MS繁殖培养基中添加2.0-5.0mg/L的6-BA、 0.2-0.6mg/LNAA、 2.0mg/L 的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8。 0008 本发明的突出优点在于: 0009 (1)采用生物技术对硬叶兰进行组织培养快速繁殖, 能够在短时间内培育出大量 适合栽培种植的硬叶兰幼苗, 保障硬叶兰种苗的增殖系数和种苗质量, 实现规模化生产, 满 。

9、足生产上的需要。 0010 (2)采用本发明所述的培养方法得到的硬叶兰丛生芽增殖系数达到20-30倍, 丛生 芽健壮, 接种到生根培养基后容易生根。 具体实施方式 0011 下面结合实施例对本发明的技术方案进一步说明。 说 明 书 1/3 页 3 CN 105284623 B 3 0012 实施例1 0013 本发明所述的硬叶兰组织培养繁育方法的一个实例, 包括以下步骤: 0014 (1)外植体的选择与消毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层 包叶后, 依次用2v/v洗洁精水溶液浸泡5min、 线状自来水冲洗15-30min、 添加了2-3滴吐 温-20的100毫升0.1v/。

10、v升汞消毒8-10min、 无菌水冲洗3-5次, 最后用消毒滤纸除去表面 水分, 得到外植体, 其中无菌水为经高温高压灭菌的蒸馏水; 0015 (2)初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤(1)得到的外植体置于解剖镜下, 剥去0.2- 0.3mm的茎尖分生组织, 接种到MS诱导培养基中, 在培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得到无菌试管苗, 其中MS诱导培养基中添加 0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为 5.8; 0016 (3)丛生芽快速繁殖培养。

11、: 将步骤(2)中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基 中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得 到丛生芽。 其中, 1/3MS繁殖培养基中添加2.0mg/L的6-BA、 0.3mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8, 丛生芽增殖系数为21.6。 0017 实施例2 0018 本发明所述的硬叶兰组织培养繁育方法的又一个实例, 包括以下步骤: 0019 (1)外植体的选择与消毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层 包叶后, 依次用2v/v洗洁精水溶液。

12、浸泡5min、 线状自来水冲洗15-30min、 添加了2-3滴吐 温-20的100毫升0.1v/v升汞消毒8-10min、 无菌水冲洗3-5次, 最后用消毒滤纸除去表面 水分, 得到外植体, 其中无菌水为经高温高压灭菌的蒸馏水; 0020 (2)初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤(1)得到的外植体置于解剖镜下, 剥去0.2- 0.3mm的茎尖分生组织, 接种到MS诱导培养基中, 在培养温度为23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得到无菌试管苗, 其中MS诱导培养基中添加 0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、。

13、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为 5.8; 0021 (3)丛生芽快速繁殖培养: 将步骤(2)中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基 中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得 到丛生芽, 其中1/3MS繁殖培养基中添加3.0mg/L的6-BA、 0.4mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8, 丛生芽增殖系数为24.8。 0022 实施例3 0023 本发明所述的硬叶兰组织培养繁育方法的再一个实例, 包括以下步骤: 0024 (1)外植体的选择与消。

14、毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层 包叶后, 依次用2v/v洗洁精水溶液浸泡5min、 线状自来水冲洗15-30min、 添加了2-3滴吐 温-20的100毫升0.1v/v升汞消毒8-10min、 无菌水冲洗3-5次, 最后用消毒滤纸除去表面 水分, 得到外植体, 其中无菌水为经高温高压灭菌的蒸馏水; 0025 (2)初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤(1)得到的外植体置于解剖镜下, 剥去0.2- 0.3mm的茎尖分生组织, 接种到MS诱导培养基中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光 照时间8-10小时/天的条件下, 培养60天, 得到无菌试管苗。 其中。

15、, MS诱导培养基中添加 说 明 书 2/3 页 4 CN 105284623 B 4 0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为 5.8; 0026 (3)丛生芽快速繁殖培养: 将步骤(2)中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基 中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得 到丛生芽, 其中1/3MS繁殖培养基中添加3.0mg/L的6-BA、 0.5mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为。

16、5.8, 丛生芽增殖系数为30.2。 0027 实施例4 0028 本发明所述的硬叶兰组织培养繁育方法的又一个实例, 包括以下步骤: 0029 (1)外植体的选择与消毒: 取硬叶兰健康植株新萌发的嫩芽作为外植体, 剥去外层 包叶后, 依次用2v/v洗洁精水溶液浸泡5min, 线状自来水冲洗15-30min, 添加了2-3滴吐 温-20的100毫升0.1v/v升汞消毒8-10min, 无菌水冲洗3-5次, 最后, 用消毒滤纸除去表面 水分, 得到无菌外植体。 其中, 无菌水为经高压灭菌的蒸馏水; 0030 (2)初代诱导获得无菌试管苗: 将步骤(1)得到的外植体置于解剖镜下, 剥去0.2- 0.。

17、3mm的茎尖分生组织, 接种到MS诱导培养基中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光 照时间8-10小时/天的条件下, 培养60天, 得到无菌试管苗。 其中, MS诱导培养基中添加 0.3mg/L的6-BA、 4.0mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为 5.8; 0031 (3)丛生芽快速繁殖培养: 将步骤(2)中得到的无菌试管苗置于1/3MS繁殖培养基 中, 在培养温度23-27, 光照强度1500lux, 光照时间为8-10小时/天的条件下培养60天得 到丛生芽。 其中, 1/3MS繁殖培养基中添加了5.0mg/L的6-BA、 0.6mg/L的NAA、 2.0mg/L的PVP、 30g/L蔗糖和5g/L的琼脂, 培养基的pH值为5.8, 丛生芽增殖系数为23.5。 说 明 书 3/3 页 5 CN 105284623 B 5 。

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