首页 > 分享 > 试管苗的增殖和生根培养.doc

试管苗的增殖和生根培养.doc

花匠小妙招
2024-10-04 09:01

专业班级：12级生物2班学号：20120322239姓名：王雪娇组：第三组组长：卢晓燕同组人：杨佳梅蒋薇袁蓉莽斌林星龙刘显号李玉胜关德红实验日期:2014年6月16日室温：25.4℃大气压实验序号：五实验名称：试管苗的增殖和生根培养一、实验目的1.了解不同植物及不同繁殖体材料的增殖繁殖方式；2.掌握不同增殖扩繁方式试管苗的转接技术；3.掌握生根培养阶段培养基类型的选择及配置方法；4.掌握试管苗生根培养的转接技术；5.掌握试管苗生根培养的环境条件控制技术；6.掌握移栽基质的配制、消毒方法；7.掌握生根试管苗的炼苗、常规移栽及移栽后的养护管理技术。二、实验原理组培中通过外植体的初代培养以及试管苗的继代增殖培养，诱导产生了大量的丛生芽、丛生茎或原球茎，离体繁殖产生的芽、嫩梢和原球茎，一般都需进一步诱导生根，才能得到完整的植株，当培养材料增殖到一定数量后，就要使部分培养物分流到生根培养阶段，并进行进一步的驯化移栽，使其适应外界的栽培环境，以获得高质量的商品苗。若不能及时将培养物转移到生根培养基上去，就会使久不转移的试管苗发黄老化，或者因过分拥挤而使无效苗增多造成抛弃浪费。试管苗的生根与移栽是植物组培快繁的第三个阶段，也是植物组培快繁的最后一道工序，是能否进行大量生产和实际应用的重要问题，也是商品化生产出售产品、取得效益的最终环节。试管苗的增殖试管苗增殖培养也叫继代培养，是实现植物快速繁殖的重要环节。这一阶段的培养目的是在较短的时间内繁殖大量有效的芽和苗。初代培养的结果，往往可以得到不定芽、再生芽、原球茎或胚状体等，但数量非常有限，还要进行增殖培养。增殖培养时选用的培养基可以和初代培养的一样，也可以略加调整，调整与否取决于增殖率，如果增殖率高，细胞分裂素的浓度可不作调整，加入适量的生长素类激素，以促进生根和防止玻璃化苗的大量发生。如果增殖率低，要调整细胞分裂素的用量，常常是提高细胞分裂素的含量。继代培养周期由分化和生长速度而定，当不定芽长满瓶时，或者培养基的养分消耗快尽时，要及时继代培养，继代周期一般为4-6周。继代培养的次数和规模要根据生产计划来确定。试管苗的生根试管苗的生根培养是使无根苗生根形成完整植株的过程，这个过程的目的就是使试管苗生出浓密而粗壮的不定根，以提高试管苗对外界环境的适应力及驯化移栽的成活率，获得更多高质量的商品苗。试管苗的生根一般需转入生根培养基中或直接栽入基质中促进其生根，并进一步长大成苗。试管苗的生根可分为试管内生根和试管外生根两种方式。Ⅰ、试管内生根（一）影响试管苗生根的因素植物离体培养中根的发生都来自不定根，根原基的形成与生长素有关，但根原基的伸长和生长可以在没有外源生长素的条件下实现。影响试管苗生根的因素很多，有植物材料自身的生理生化状态，也有外部的培养条件，如基本培养基、生长调节物质以及外部的环境因素等等，要提高试管苗的生根率，就必须考虑这些影响因素。1.植物材料不同植物种、不同的基因型、甚至同一植株的不同部位和不同年龄对根的分化都有决定性的影响。因植物材料的不同，试管苗生根从诱导至开始出现不定根，一般快的只需3～4天，慢的则要3～4周甚至更久。此外，生根难易还与母株所处的生理状态有关，因取材季节和所处环境条件不同而异。不同植物材料生根的一般规律是：木本植物较草本植物难，成年树较幼年树难，乔木较灌木难，同一植物中上部材料较基部材料难，休眠季节取材较开始旺盛生长的季节取材难。但是具体到不同的植物种类也存在个性的差异，一般自然界中营养繁殖容易生根的植物材料在离体繁殖中也较容易生根。2.基本培养基诱导生根的基本培养基，一般需要降低无机盐浓度以利于根的分化，常使用低浓度的MS培养基，如使用1/2MS、1/3MS或1/4MS的基本培养基，如无籽西瓜在1/2MS时生根较好，硬毛猕猴桃在1/3MS时生根较好，月季的茎段在1/4MS时生根较好，水仙的小鳞茎则在1/2MS时才能生根。矿质元素的种类对生根也有一定的影响。对大多数植物而言，大量元素中NH4+多不利于发根；生根培养一般需要磷和钾元素，但不宜太多；Ca2+一般有利于根的形成和生长；微量元素中以硼(B)、铁(Fe)对生根有利。此外，糖的浓度对试管苗的生根也有一定的影响，一般低浓度的蔗糖对试管苗的生根有利，且有利于试管苗的生活方式由异养到自养转变，提高生根苗的移栽成活率，其使用浓度一般在1%～3%，如桉树的不定枝发根最适宜的蔗糖浓度为0.25%，马铃薯发根则为1%。但也有些植物在高浓度时生根较好，如怀山药在蔗糖6%时生根状况最好。3.植物生长调节剂（1）植物生长调节剂的选用及配比在试管苗不定根的形成中，植物生长调节剂起着决定性的作用，一般各种类型的生长素均能促进生根。赤霉素、细胞分裂素和乙烯通常不利于发根，如与生长素配合使用，则浓度一般宜低于生长素浓度。脱落酸（ABA）有助于部分植物试管苗的生根。植物生长延缓剂如多效锉（PP333）、矮壮素（CCC）、比久（B9）对不定根的形成具有良好的作用，在诱导生根中所使用的浓度一般为0.1～4.0mg/L，如苹果试管苗生根时若在培养基中附加PP333O.5～2.Omg/L可显著提高生根率。据统计，试管苗的生根培养中单一使用一种生长素的情况约占51.5%，使用生长素加激动素的约占20.1%。生根培养中常用的生长素主要为IBA、NAA、IAA和2,4-D等，其中IBA、NAA使用最多。IBA作用强烈，作用时间长，诱导根多而长，NAA诱导根少而粗，一般认为用IBA、NAA0.1～1.0mg/L有利生根，两者可混合使用，但大多数单用一种人工合成生长素即可获得较好的生根效果，常见植物生根培养基的生长调节剂水平见表6-1。此外，生根粉(ABT)也可促进不定根的形成，并可与生长素、赤霉素等配合使用，如猕猴桃采用lmg/L或1.5mg/L的1号ABT生根粉生根率可达100%，在赤按组织苗生根中ABT与IBA配合使用较单独使用效果好。植物名称生长调节剂种类生长调节剂浓度桃NAA0.1mg/L非洲紫罗兰NAA0.O1～0.2mg/L变叶木NAA0.5mg/L康乃馨NAA0.2mg/L球根秋海棠IBA0.5mg/L铁皮石斛IBA0.1mg/L羽叶甘蓝IBA+NAAIBA0.5mg/L+NAA0.lmg/L大花蕙兰IAA或IBA+NAAIAA1.0mg/L或IBA0.8mg/L+NAA0.lmg/L君子兰IBA+NAAIBA0.O1～1.0mg/L+NAA0.O1～1.Omg/L表1-1常见植物生根培养基的生长调节剂水平外植体的类型不同，试管苗不定根的形成所需的植物生长调节剂也不一样。一般愈伤组织分化根时，使用萘乙酸（NAA）最多，浓度在0.02～6.0mg/L，以1.0～2.0mg/L为多；使用吲哚乙酸（IAA）+激动素（KT）的浓度范围分别为0.1～4.0mg/L和0.01～1.0mg/L，而以1.0～4.0mg/L和0.01～0.02mg/L居多。而胚轴、茎段、插枝、花梗等材料分化根时，使用吲哚丁酸（IBA）居首位，浓度为0.2～10mg/L，以1.0mg/L为多。不同植物试管嫩茎诱导生根的合适生长调节剂，需进一步通过试验来确定。若使用浓度过高，容易使茎部形成一块愈伤组织，而后再从愈伤组织上分化出根来，这样，因为茎与根之间的维管束连接不好，既影响养分和水分的输导，移栽时，根又易脱落，且易污染，成活率不高。如苹果生根培养基中IBA或NAA浓度超过1.0mg/L，多数苗都是先于苗基切口处产生愈伤组织，随后在愈伤组织上分化生根，这样当生根移出栽植后，苗基的愈伤组织很快干死，使苗与根间形成一个隔层，成活率大大降低。总之，试管苗的生根培养多数使用生长素，大都以吲哚丁酸（IBA）、萘乙酸（NAA）、吲哚乙酸（IAA）单独使用或配合使用，或与低浓度细胞分裂素配合使用，萘乙酸与细胞分裂素配合时一般摩尔比在（20～30）：1为好。对于已经分化根原基的试管苗，则可在没有外源生长素的条件下实现根的伸长和生长。（2）植物生长调节剂的使用方法植物生长调节剂常用的使用方法是将植物生长调节剂预先加入到培养基中，然后再接种材料诱导其生根，即“一步生根法”。最常用的方法是采用固体琼脂培养基进行生根培养，以利于植株的固定和生根。对于在固体培养基中较难生根的植物类型，则可采用液体培养基，并在液体培养基上加一滤纸桥进行生根培养，以解决试管苗固定和缺氧的问题。近年来，人们为了促进试管苗的生根，在植物生长调节剂的使用方法进行了创新，将需生根的植物材料先在一定浓度的植物生长调节剂(无菌)中浸泡或培养一定时间，然后转入无植物生长调节剂的培养基中进行培养，即“两步生根法”，可显著提高生根率，常见植物两步生根法的处理方法及其生根率见表。植物名称诱导生根的处理方法生根率核桃1/4DKW+IBA5.0～10.0mg/L（暗培养10～15天）60.5%～89.7%牡丹IBA50～100mg/L（浸泡2～3小时）90%以上板栗IBA1.0mg/ml（浸泡2分钟）90%猕猴桃IBA50mg/L（浸泡3～3.5小时）93.3%4.其他物质一般认为黑暗条件对根的生长有利，因此在生根培养基中加入适量的活性炭对许多植物的生根均有利，如草莓、非洲菊、水稻等的生根培养中加入活性炭可进行根系生长粗壮、白嫩，且生根数量多。另外，在一些难生根的植物生根培养基中加入间苯三酚、脯氨酸（100mg/L）和核黄素（1mg/L）等也有利于试管苗的生根，如苹果新梢的生根。5.继代培养次数试管嫩茎(芽苗)继代培养的代数也影响其生根能力，一般随着继代代数的增加，生根能力有所提高。如苹果试管嫩茎继代培养的次数越多则生根率越高，长富士苹果在前6代之内生根率低于30%，生根苗的平均根数不足2条，而10代时生根率达80%，12代以后则生根率稳定在95%以上，生根条数平均可达7条左右；新红星苹果虽然生根困难，但继代培养12代以后，其生根率可达60%左右。其他植物如杜鹃、杨树、葡萄等经过若干次继代培养也能提高生根率，而且从试管苗长成的植株上切取插条要比在一般植株上切取的更易生根。6.光照光照强度和光照时数对发根的影响十分复杂，结果不一。一般认为发根不需要光，如毛樱桃新梢适当暗培养可使生根率增加20%，生根比较困难的苹果暗培养可提高其生根率，杜鹃试管嫩茎低光强度处理也可促进其生根。但草莓生根培养中根系的生长发育则以较强的光照为好。一般认为在减少培养基中蔗糖浓度的同时，需要增加光照强度(如增至3000～100001x)，以刺激小植株使之产生通过光合作用制造食物的能力，便于由异养型过渡到自养型，使植株变得坚韧，从而对干燥和病害有较强的忍耐力。虽然在高光强下植株生长迟缓并轻微退绿，但当移人土中之后，这样的植株比在低光强下形成的又高又绿的植株容易成活。7.pH值试管苗的生根要求一定的pH值范围，不同植物对pH值要求不一，一般为5.0～6.0，如杜鹃试管嫩茎的生根与生长在pH值为5.0时效果最好，胡萝卜幼苗切后侧根的形成在pH为3.8时效果最好，水稻离体种子的根生长在pH为5.8效果最好。8.温度试管苗在试管内生根，或在试管外生根，都要求一定的适宜温度，一般为16℃25℃，过高过低均不利于生根。植物生根培养的温度一般要比增殖芽的温度略低一些，但不同植物生根所需的最适温度不同。如草莓继代培养芽的再生的适宜温度为32℃，生根温度则以28℃（二）试管苗的试管内生根技术试管内生根是为了成功地将组培苗移植到试管外的环境中，也是使试管苗适应外部环境的一个过渡时期。在培养材料增殖到一定数量后，就要将成丛的苗分离生根，让苗长高长壮以便于移栽。1.试管苗生根的难易在生根培养基上，多数植物生根比较容易，如菊花、百合、香石竹、洒金柳等，一般只需一次培养。多采用1/2或1/4的MS基本培养基，全部去掉或仅用很低的细胞分裂素，并加人适量的生长素（NAA、IBA等）进行生根培养，一般2～4d即可见根，但随植物种类不同而异，当洁白的正常短根长到1cm左右时即可出瓶种植。少数植物生根比较困难，主要由植物自身的遗传特性所决定，如木本植物较草本植物生根困难，少数由培养基不适所引起，尤其是增殖阶段细胞分裂素用量过高时，易引起生根困难。若在小苗时残留的细胞分裂数量较多，在生根培养基上仍不能停止增殖，试管苗多而小，也影响其生根。这就需要采取一定的措施进行处理以促进试管苗的生根，如滤纸桥培养、分次培养等。2.促进试管苗生根的技术试管苗的试管内生根中，一般需把大约1cm长的小枝条逐个剪下，然后进行生根诱导。诱导试管苗生根的方法主要为：（1）将新梢基部浸人50或100mg/LIBA溶液中处理4～8小时，诱导根原基的形成，再转移至无植物生长调节剂的培养基上促进幼根的生长；（2）在含有生长素的培养基中培养4～6天，待根原基或幼根形成后，再转移至无植物生长调节剂的培养基上进行生根培养；（3）直接移入含有生长素的生根培养基中进行生根培养。上述三种方法均能诱导新梢生根，但前二种方法对新生根的生长发育则更为有利。而第三种对幼根的生长有抑制作用，其原因是当根原基形成后，较高浓度生长素的继续存在不利于幼根的生长发育，但这种方法比较简单可行，在生产中最常用。对于容易生根的植物，还可采用下列方法促进试管苗生根：(1)延长在增殖培养基中的培养时间，试管苗即可生根，如洒金柳等的生根培养；(2)有意降低一些增殖率，减少细胞分裂素的用量而增加生长素的用量，将增殖与生根合并为一步，如吊兰、花叶芋、火炬花等能丛植的植物种类的生根培养；(3)切割粗壮的嫩枝在适宜的介质中生根(即试管外生根)，如桤木、某些杜鹃、菊花、香石竹等。试管外生根没有生根阶段，可以省去一次培养基制作，切割下的插穗也可用生长素溶液浸蘸处理，以促使其生根。对于少数生根比较困难的植物，则可采用下列方法促进试管苗生根：（1）滤纸桥培养：采用粗试管加液体培养基，并在试管中放置滤纸做的筒状杯(滤纸桥)，托住切成单条的嫩枝，滤纸桥略高于液面，靠滤纸的吸水性供应嫩枝的水、营养成分和生长素等，可使生根过程加速，如山茶花等木本花卉试管苗的生根培养。（2）分次培养：对于少数由于小苗残留的细胞分裂素较多而难以生根的植物，可先在无植物生长调节剂的MS培养基中过渡培养一次，再转接到生根培养基中进行生根培养。对于一些生长细弱的植物，一般也需要采用不加植物生长调节剂的培养基进行一次壮苗培养，以促使幼苗粗壮，便于诱导生根和以后的种植。另外从胚状体发育成的小苗，常常有原先已分化的根，这种根可以不经诱导生根阶段而生长。但因经胚状体途径发育的苗数特别多，并且个体较小，所以也常需要一个低浓度或没有植物植物生长调节剂的培养基培养的阶段，以便壮苗生根。试管中的植物是以培养基中的糖为碳源，即异养型，生根阶段必须进行调整，使它们减少对异养条件的依赖，逐步增强光合作用的能力。一般同时采取两项措施，即减少培养基中糖含量和提高光照强度，糖一般约减少一半，光照强度则随植物种类不同而异，一般由原来的300～500lx或500～10001x的水平提高到1000～3000lx或5000lx的水平。在无机盐和糖浓度减半、高光强的条件下，植物能较好地生根，对水分胁迫和疾病的抗性也会有所增强，植株可能表现出生长延缓和较轻微的失绿，但这样的幼苗，要比在低光强条件下的较绿较高的幼苗移栽成活率更高，且自然光照的较灯光照明的组培苗更能适应室外环境。Ⅱ、试管外生根所谓试管外生根，就是将组织培养中茎芽的生根诱导同驯化培养结合在一起，直接将茎芽扦插到试管外的有菌环境中，边诱导生根边驯化培养。实验证明很多植物可以把试管繁殖的嫩枝当作微型插条，直接插入基质中生根成活，如将杨树、桦木和其他阔叶树试管繁殖的嫩梢，直接栽入泥炭和蛭石基质中，可很快生根，且成活率较高；采用无菌简易快繁技术对秋海棠叶进行离体繁殖，使体外生根和驯化在带菌条件下可一步完成；杜鹃嫩茎在试管内成苗、在试管外生根效果也较好；越橘等植物的嫩茎在试管外生根则远比在试管内好。但有些植物则需要接种在生根培养基上培养一段时间，此后无论生根与否都可移栽成活，如月季、香石竹等。1.试管外生根的特点试管外生根将试管苗的生根阶段和驯化阶段结合起来，省去了用来提供营养物质并起支持作用的培养基，以及芽苗试管内生根的传统程序。该技术的应用不仅减少了一次无菌操作的步骤，提高了培养空间的利用率，同时又简化了组培程序，解决了组培工厂化育苗生根的难题，可降低生产成本、提高繁殖系数。一般认为诱导试管苗生根过程的费用占总费用的35%～75%，而采取瓶外生根技术可以减少生根总费用的70%左右。但是，实验中很多植物瓶外生根的生根率比瓶内生根率略低。其主要原因为试管苗从无菌状态的高温、高湿、弱光的环境过渡到有菌状态的自然条件，一些弱苗、小苗因不适应环境条件的变化而导致死亡。常见的情况主要有两种，一种为基部湿度过大导致基部得病腐烂而死，另一种为植株缺水叶片失水萎蔫而死，因此在进行试管外生根时要特别注意水分的控制。一般只要严格控制幼苗质量和环境因素，瓶外生根的生根率与瓶内生根率可以不相上下，甚至可高出瓶内生根率。移栽成活率是检验组培是否成功的关键，也是检验组培能否进行工厂化的关键，试管苗瓶外生根的成活率与瓶内生根后移栽的成活率相比可显著提高，其主要原因为：在培养基上诱导形成的根与芽茎的输导系统不同，或者根细小、无根毛，发育不良，且生根试管苗的根系一般无吸收功能或吸收功能极低，气孔不能关闭，开口过大，叶片光合能力低等，各综合原因造成试管苗容易死亡；瓶外生根苗避免了根系附着的琼脂造成的污染腐烂，且根系发育正常健壮，根与芽茎的输导系统相通，吸收功能较强，并且试管苗瓶外生根在生根过程中即已逐步适应了环境，经受了自然环境的锻炼，不适应环境的弱苗在生根过程中已经被淘汰，移栽苗都是抗逆性强的壮苗，容易成活。2.影响试管外生根的因素（1）生长素在植物的组织培养中，植物生长调节剂起着决定性的作用，而生长素一般都能促进生根。不定根的发生和发育的整个阶段一般都需要补充生长素，生长素的存在不仅有利于根原基的诱导，还有利于不定根的生长，但过高的生长素也会抑制根原基的生长，进而影响根的伸长。一般根原基的启动和形成阶段生长素起着关键作用，而根原基的伸长和生长则可以在没有外源生长素的条件下实现。试管外生根就是基于上述原理，在生根的起始阶段采用高浓度的生长素刺激根原基的形成，而在根原基的伸长阶段撤掉生长素，解除其抑制作用。因此生长素的存在对试管苗瓶外生根是必需和必要的，如牡丹丛生芽在试管外生根时，只有体内BA水平下降、IAA水平升高后才有利于不定根的形成。（2）试管苗的质量不同的植物、不同的基因型、不同的幼化程度对分化不定根均有决定性的影响。一般木本植物比草本植物难，只有多次继代后才能生根，且年龄越小生根越容易，另外生长旺盛健壮的苗也较生长细弱的苗生根力强。因此，通过多次继代，并采用半木质化、叶片肥厚、茎秆粗壮的无根苗可获得较高的生根率。此外，无根试管苗在进行瓶外生根前，一般必须进行炼苗过程，如金线莲组培苗在试管外生根时，采用松口炼苗比封口练苗的成活率可明显提高；一品红试管苗在试管外生根时通过强光充足练苗，可使试管苗茎干及叶柄发红，幼茎组织充实，达到较高的木质化程度，从而提高抗性，促进生根。经过锻炼的试管苗，叶片抗蒸腾作用和适应能力增强，光合性能显著提高，适应外界环境的能力增强，因此生根成活率提高。（3）生根方式试管苗瓶外生根大多采用微体扦插法进行，即将无根苗切下，经过生长素处理后，扦插到基质中，进行保湿管理，来完成试管苗的生根。微体扦插基质一般采用既透气又保湿的基质，如苔鲜、蛭石、珍珠岩、泥炭等，不同植物要求不同，如金线莲组培苗试管外生根以苔鲜作基质最为理想，狗头枣组培苗试管外生根以蛭石为好，一品红试管苗试管外生根则以珍珠岩较好。此外，试管苗还可进行气培生根和水培生根。如部分木本植物和草本植物的试管苗茎段进行植物生长调节剂处理后，放到无任何基质的气培容器中进行生根，人为调节环境条件，其生根率与常规生根培养不相上下；满天星组培苗采用瓶外水培生根，将健壮试管苗的茎段用ABT生根粉处理后，然后扦插进行水培，覆膜保湿管理，其生根率可达90%以上，且根系发达，生长势强。在试管外生根的具体操作中，应根据不同植物的种类、生根的难易、继代的次数来决定采取何种方式。（4）环境条件瓶外生根过程中的湿度、温度和光照条件是获得成功的关键因素。试管苗一般生长在高湿、弱光、恒温的条件下进行异养生活，出瓶后若不保湿，极易失水萎蔫死亡。因此，试管苗在进行瓶外生根时，必须经过由高湿到低湿、由恒温到自然变温、由弱光到强光的分步练苗过程。在试管外生根前期需采取覆膜或喷雾等方法，保证空气相对湿度达到85%以上，温度起始阶段则控制在20℃温度、光照、基质水分和空气湿度的平衡是获得较高生根率的保证。在影响瓶外生根的环境因子中，最重要的是温度，其次是基质水分和湿度，最后是光照，在具体操作中应注意平衡。3.试管外生根的技术有些植物种类在试管中难以生根，或有根但与茎的维管束不相通，或根与茎联系差，或有根而无根毛，或吸收功能极弱，均导致移栽后幼苗不易成活，这就需要采用试管外生根法。试管外生根的方法主要有以下四种：（1）在试管内诱导根原基后再移栽首先从继代培养获得的丛生芽中剪取1cm～3cm长且生长健壮的小芽，转入生根培养基中培养一段时间（2d～10d），待嫩茎基部长出根原基后再取出栽入营养钵中，一般5d～6d后即可自行生根，此根系一般具有根毛，且吸收功能好。该方法不仅移栽简便、易行且不伤根、成活率高，而且可缩短生产周期，又便于贮运，一般一个广口保温瓶可装1000株带有根原基的小苗，可转运千里之外进行移栽，实现苗木运输移栽的微型化。如月季试管苗移栽时易发生机械损伤，导致成活率低下且不稳定，若用具有根原基的试管苗直接移栽则既耐贮运，又能显著提高移栽成活率。（2）在生根小室进行生根和炼苗首先做一个生根小室，采用透气又保湿的基质如泥炭、蛭石、珍珠岩、苔藓等代替琼脂培养基，采用生根营养液代替蔗糖等营养成分，并人工控制温度、光照和湿度，一般采用人工喷雾，雾滴要求细，以提高空气湿度，又不致使叶面有水滴流出。然后剪下长1cm～3cm且生长健壮的嫩茎转入生根小室，一般经3周～4周的培养，即可产生发育良好，具吸收功能的根。此后再栽入温室，可提高成活率，如杜鹃花的嫩枝在试管内外都能很好地生根，而部分品种采用此法切下嫩枝栽入瓶外基质，比试管内的生根更好。生根小室生根效果较好，条件易控制，但成本较高，而且面积较小。国外有些商业性实验室用自动化湿度调节系统，旋转培养，进行生根驯化，取得了良好的效果，但因费用太高，较少使用。（3）盆插或瓶插生根法采用罐头瓶或盆为容器，内装泥炭或腐殖土与细沙，每瓶插入10株～30株无根壮苗，插入深度约为0.3cm～1.2cm，加入生根营养液，在一定的温度、湿度及光照条件下进行培养，约20d即可长出新根，约30d后待二级根长至8cm～12cm时即进行移栽，可提高成活率。如我国西北干旱地区杨树的试管苗移栽较难成功，采用盆插或瓶插生根法来简化生根和移栽，既节省了设备投入，降低了成本，又提高了移栽成活率。此外，甘肃农大葡萄脱毒研究组还研制了葡萄脱毒苗简易快繁技术，用废旧罐头瓶代替三角瓶，用蛭石代替琼脂，采用去糖的GN营养液，且用瓶口用打了孔的膜包扎，接入10株～12株二节无根小苗或一节带根小苗，进行半开放培养，经15d～20d培养即能长成4cm～5cm的健壮幼苗，栽入沙床即可。变三步炼苗为一步炼苗，简化了移栽过程，并大幅度降低了成本，在较粗放的移栽条件下既能获得较高的成活率。（4）在智能化苗床进行生根和炼苗在组织培养试管苗时，还可将无根苗采用快繁计算机智能系统及技术进行试管外生根，不经试管内生根培养即可促使试管苗生根后再移植，可降低成本、提高工效。如甜叶菊幼叶通过组织培养分化的初生芽，转到壮苗生根培养基上生长，当苗高1～2cm时，不待长根，即将小苗插入快繁的智能化苗床基质中，能很快生根成活；中华猕猴桃试管苗移栽时，可将2cm高的芽从培养基里取出，用IBA浸泡茎基部2～3h，然后繁于智能苗床中，15～20d即能生根，生根率最高可达75％；山楂的试管苗培养，用无根苗繁于以蛭石为基质的智能化苗床中，10d后根部长出许多根毛，移入大田后，成活率在90％以上；切花菊组培苗采用智能化苗床生根的时间需20d左右，与试管内生根基本一致；康乃馨试管苗运用该系统及技术进行瓶外生根，以ABT100mg/L处理1h，生根率达90.7％；大花惠兰的试管苗可直接移入该系统的环境中进行炼苗，成活率可达98%。试管苗在智能化苗床中生根，因在计算机创造的模拟自然环境中进行，用的是一般的无机基质，不仅方法简便，易于操作，而且出苗率高，成本低，根系发育好，移植后生长正常，无生长停滞现象。同时，组织培养前期嫩枝在试管内呈几何级数增加，与试管外快繁生根相结合，可提高繁殖系数和成活率，有利于工厂化育苗的推广应用。试管苗的驯化试管苗驯化的目的：在于提高试管苗对外界环境条件的适应性，提高其光合作用的能力，促使试管苗健壮，最终达到提高试管苗的移栽成活率。驯化的原则：应从温度、湿度、光照及有无菌态等环境要素进行，驯化开始数天内，应和培养时的环境条件相似；驯化后期，则要与预计的栽培条件相似从而达到逐步适应的目的。试管内的生根需要经过一段时间的驯化，使其逐步适应外界环境后，再移栽到疏松通气的基质中，并应加强管理，注意控制温度、湿度、光照，及时防治病害，以提高移栽苗的成活率。由于试管苗的生长环境与外界环境的差异很大，在移栽前必须要经过驯化或称炼苗的过程，以逐渐提高试管苗对外界环境条件的适应性，提高其光合作用能力，从异养向自养转变，促使试管苗健壮生长，最终达到提高移栽苗成活率的目的，其方法是：将装有试管苗的培养容器移到温室或大棚，先不打开瓶盖或封口膜，并不能立即接受太阳光的直接照射，以免瓶内升温太快，使幼苗蒸腾作用过强失水枯萎，甚至死亡。可以先进行适当避遮，在逐渐拆除保护，让试管苗接受自然散射光照射，并逐步适应自然的昼夜温差变化，3到5天后打开瓶盖或封口膜，使试管苗接近外界环境条件，再炼苗2—3天后即可移载，试管苗驯化成功的标准是茎长粗、叶增绿、根系延长并由黄白色变为黄褐色。试管苗的移栽试管苗移栽是植物组培快繁中的最后一个环节，也是一个非常重要的工作环节，若这个环节做不好，就会造成所有的组培工作前功尽弃。为了做好试管苗的移栽工作，必须选择合适的基质，并配合以相应的管理措施，才能确保整个工作有条不紊地进行。一、试管苗移栽难以成活的原因试管苗是在无菌、恒温、适宜光照和相对湿度近100%的优越环境条件下形成的，并一直培养在富有营养成份与植物生长调节剂的培养基内，因此在生理、形态等方面都与自然条件生长的正常小苗有着很大的差异，存在一定的脆弱性，在移栽过程中很容易死亡，造成极大的经济损失。首先，从叶片上看，试管苗叶片表面的角质层不发达或没有，叶片通常没有表皮毛，或仅有较少的表皮毛，叶片上甚至出现了大量的水孔，且气孔的数量、大小也往往超过普通苗。由此可知，试管苗更适合于在高湿的环境中生长，当将它们移栽到试管外正常的环境中时，试管苗失水率很高，非常容易死亡。因此，为了要改善试管苗的上述不良生理、形态特点，则必须要经过与外界相适应的驯化处理，常采取的措施为：对外界要增加湿度、减弱光照；对试管内要通透气体、增施二氧化碳肥料、逐步降低空气湿度等。此外，当试管苗移出培养容器后，首先遇到的是环境条件的急剧变化，同时，试管苗也需由异养转为自养。因此，在移栽过程中必须创造一定的环境条件，使试管苗逐渐过渡，以利于根系的发育及植株的成活。另外，因为试管苗在无菌的环境中生长形成，对外界细菌、真菌的抵御能力极差，为了提高其成活率，需对栽培驯化基质进行灭菌，在培养基质中可掺入75％的百菌清可湿性粉剂200～500倍液进行灭菌处理。总体而言，试管苗在移栽过程中经历了由无菌到有菌、由恒温到变温、由弱光到强光、由高湿到低湿、由自养到异养的急剧变化，因此必须通过炼苗，例如通过灭菌、降温、增光、控水、减肥等措施，使它们逐渐地适应外界环境，从而使生理、形态、组织上发生相应的变化，使之更适合于自然环境，也只有这样才能保证试管苗顺利地移栽成功。二、提高移栽成活率的技术和措施(一)移栽准备1.盆土的准备为了有利于试管移栽苗根系的发育，栽种试管苗的基质要求具备透气性、保湿性和一定的肥力，且容易灭菌处理，不利于杂菌滋生，常选用珍珠岩、蛭石、砂子等，为了增加粘着力和一定的肥力也可配合草炭土或腐殖土。配时按比例搭配，一般用珍珠岩:蛭石:草炭土为1:1:0.5，也可用砂子:草炭土为1:1，具体应根据不同植物的栽培习性来进行配制，这样才能获得满意的栽培效果。以下介绍几种常见的试管苗栽培基质：（1）河砂河砂的特点是排水性强，但保水蓄肥能力较差，一般不单独用来直接栽种试管苗，常与草炭土等混合使用。河砂分为粗砂、细砂两种类型，粗砂即平常所说的河砂，其颗粒直径为1～2mm，细砂即通常所说的面砂，其颗粒直径为0.1～0.2mm。（2）蛭石蛭石是由黑云母和金云母风化而成的次生物，通过高温处理使其疏松多孔，质地很轻，能吸收大量的水，保水、持肥、吸热、保温的能力也较强，常与草炭土等混合使用。（3）草炭土草炭土是由沉积在沼泽中的植物残骸经过长时间的腐烂所形成，其保水性好，蓄肥能力强，呈中性或微酸性反应，但通常不能单独用来栽种试管苗，宜与河砂等种类相互混合配成盆土而加以使用。（4）腐殖土腐殖土是由植物落叶经腐烂所形成，一种是由自然形成，一种是由人为造成。人工制造时可将秋季的落叶收集起来，然后埋入坑中，灌水压实令其腐烂，第二年春季再将其取出置于空气中，在经常喷水保湿的条件下使其风化，然后过筛即可获得。腐殖土含有大量的矿质营养及有机物质，通常不能单独使用，宜与河砂等基质相互混合使用。掺有腐殖土的栽培基质一般有助于植株发根。此外，由于试管苗实行无菌培养，因此在移栽中必须注意卫生管理，避免移栽损失，所有的移栽土最好都进行消毒。可采用湿热消毒法，即在高压消毒锅中以15磅压力维持20～30分钟；也可采用化学药剂消毒法，即将浓度为5%的福尔马林或0.3%硫酸铜稀释液泼浇于土中，然后用塑料布覆盖一周后揭开，再翻动土，让其溶液气味挥发掉。2.栽培容器的准备栽培容器可用6cm×6cm～10cm×10cm的软塑料营养钵，也可用育苗盘或直接移于苗床。其中营养钵占地大，耗用大量基质，但幼苗不用再次移栽；育苗盘和苗床一般需要二次移苗，但节省空间和基质。3.遮荫和加热设备的准备试管苗移栽时需要提供一个逐渐过渡的环境条件，尤其是在冬天或夏天移栽时，在最初的几天里要注意温度与日照不能有急剧的变化，温度最好与原培养室内的温度(25±2℃4.炼苗试管苗在移栽前几天一般都需要进行炼苗，让它有个逐步适应环境的过渡阶段，一般方法是先将培养瓶从培养室拿到常温下放置，然后将试管苗容器口上包扎的塞子或纸去掉放置几天，此时需注意保持空气湿度，并防止杂菌污染，尤其是在炎热的夏季，由于气温较高，当封口打开后，该容器就由原来的无菌状态转为有菌状态，杂菌容易很快生长而污染试管苗。在去掉封口时采用培养基上加薄层水的处理效果较好，即可提高湿度又可减少杂菌生长，但若放置时间较长则需换水。待试管苗逐步适应外界的光照、温度和湿度后再进行移栽，即可提高移栽成活率。(二)移栽技术移栽前，先将基质浇透水，并用一个筷子粗的竹签在基质中开一穴，然后再将植株种植下去，最好让根舒展开，并防止弄伤幼苗。种植时幼苗深度应适中，不能过深或过浅，覆土后需把苗周围基质压实，也可只将容器摇几下待基质紧实即可，以防损伤试管苗的细弱根系和根毛。移栽时最好用镊子或细竹筷夹住苗后再种植在小盆内，移栽后需轻浇薄水，再将苗移入高湿的环境中，保证空间湿度达90%以上。移栽时，首先将试管苗从所培养的瓶中取出，取时要用镊子小心地操作，切勿把根系损坏，然后把根部粘附的琼脂漂洗掉，要求全部除去，而且动作要轻，以减少伤根伤苗。琼脂中含有多种营养成份，若不去掉，一旦条件适宜，微生物就会很快滋生，从而影响植株的生长，甚至导致烂根死亡。(三)移栽后的养护管理试管苗是否能够移栽成功，除要求试管苗生长健壮，既有发育完整良好的根系、其根的维管束又与茎相连之外，移栽后的养护管理也是一个非常关键的环节。试管苗移栽后的养护管理主要应注意以下几个方面：1.保持小苗的水分供需平衡在试管或培养瓶中的小苗，因湿度大，茎叶表面防止水分散失的角质层等几乎没有，根系也不发达或无根，出瓶种植后即使根的周围有足够的水分也很难保持水分平衡。因此，在移栽初期必须提高周围的空气湿度(达90%～100%)，使叶面的水分蒸腾减少，尽量接近试管或培养瓶内的条件，才能保证小苗的成活。为保持小苗的水分供需平衡，湿度要求较高，首先营养钵的培养基质必须浇透水，所放置的床面也最好浇湿，然后搭设小拱棚或保湿罩，以提高空气湿度，减少水分的蒸发，并且初期需经常喷雾处理，保持拱棚薄膜或保湿罩上有水珠出现。当5～7d后，发现小苗有生长趋势时，才可逐渐降低湿度，减少喷水次数，将拱棚或保湿罩定期打开通风，使小苗逐步适应湿度较小的条件。约15d后即可揭去拱棚的薄膜或保湿罩，并给予水分控制，逐渐减少浇水或不浇水，促进小苗长壮。同时，水分控制也要得当，移栽后的第一次浇水必须浇透，为了便于掌握，可以采用渗水方式进行，即将刚移栽的盆放在盛有水的面盆或水池中，让水由盆底慢慢地渗透上来，待水在盆面出现时再收盆搬出。平时浇水要求不能过多过少，注意勤观察，保持土壤湿润，夏天则需喷与浇相结合，即可提高湿度，又可降低温度，防止高温伤害。另外，在保持湿度的同时，还需注意适当透气，尤其是在高温季节，高湿的条件下很容易引起幼苗得病而死亡。罩苗时间的长短应根据植物种类与气候条件来确定，一般木本的时间可相对长些，干旱季节及冬季也可长一些，反之则短，一般一个星期左右即可。保湿罩揭开后还应适当地在苗上喷水，以利于植株的生长和根系的充分发育。2.防止菌类滋生试管苗在试管内的生长环境是无菌的，而移栽出来后很难保持完全无菌，因此在移栽过程中应尽量避免菌类的大量滋生，才能保证试管苗的过渡成活，提高成活率。要防止菌类滋生，首先应对基质进行高压灭菌、烘烤灭菌或药剂灭菌，同时还需定期使用一定浓度的杀菌剂，以便更有效地保护幼苗，如浓度800～1000倍的多菌灵、托布津等，喷药间隔宜7～10d一次。此外，在移苗时还应注意尽量少伤苗，伤口过多、根损伤过多，都易造成死苗。为了减少试管苗出瓶操作时对幼苗产生的损伤，可采用新的组培苗出瓶技术，即无需洗去组培苗上附着的培养基，而直接从培养瓶中取苗栽植，这样既省去了一道操作程序，又能进一步提高成活率，但需更加注意移栽前后的消毒灭菌。另外，试管苗移栽后喷水时还可加入0.1%的尿素，或用1/2MS大量元素的水溶液作追肥，并在开始给予比较弱的光照，当小植株有了新的生长时再逐渐加强光照，促进光合产物的积累，可以加快幼苗的生长与成活，增强抗性，也可一定程度地抑制菌类的生长。3.保持一定的光、温条件试管苗在试管内有糖等有机营养的供应，主要营异养生活，出瓶后须靠自身进行光合作用以维持其生存，因此光照强度不宜太弱，以强度较高的散射光较好，最好能够调节，随苗的壮弱、喜光或喜阴、种植成活的程度而定，一般约在1500～4000lx甚至10000lx之间。光线过强会使叶绿素受到破坏，引起叶片失绿、发黄或发白，使小苗成活延缓。过强的光线还能刺激蒸腾作用加强，使水分平衡的矛盾更加尖锐，容易引起大量幼苗失水萎蔫死亡。一般试管苗移栽初期可用较弱的光照，在小拱棚上加盖遮阳网或报纸等，以防阳光灼伤小苗，并减少水分的蒸发，夏季则更要注意，一般应先在荫棚下过渡，当小植株有了新的生长时，逐渐加强光照，后期则可直接利用自然光照，以促进光合产物的积累，增强抗性，促进移栽苗的成活。4.保持基质适当的通气性移栽基质要保持良好的疏松通气性，才有利于植株根系的发育。首先要选择适当的栽培基质，要求疏松通气，同时具有适宜的保水性，容易灭菌处理，且不利于杂菌滋生。常用粗粒状蛭石、珍珠岩、粗沙、炉灰渣、谷壳(或谷炭壳)、锯木屑、腐殖土等，或者根据植物种类的特性，将它们以一定的比例混合应用。栽培基质一般不重复使用，如重复使用，则应在使用前进行灭菌处理。同时，在平常的管理中也要注意浇水不易过多，并及时将过多的水沥除，以利根系的呼吸，有利于植株的生根成活。此外，平时还要注意经常松土，以保持基质疏松通气。松土时必须小心操作，切勿把根系弄断损坏，所用工具的大小应视容器大小而定，一般以细竹筷为好。5.防止风雨的影响由于试管苗长时间培养在室内的优越环境条件下，一般都比较娇嫩，如不注意风雨的影响，就很难移栽成功。因此，试管苗一般应移栽在无风的地方，同时在移栽初期应注意避免大雨的袭击，以减少移栽损失。另外，在规模化生产的过渡培养温室内配置调温、调湿、调光和通气等设施，虽然投资成本较大，但可保障过渡组培苗的成活率。在管理措施完善的单位，一般3～5年即可收回投资，与条件差的过渡环境相比可获得更好的经济效益。综上所述，试管苗在移栽的过程中只要精心养护，把水分平衡、菌类滋生、光、温条件和基质通气性等控制好，试管苗即会茁壮生长，获得成功。三、主要仪器、试剂、材料材料：植物组织培养实验室内铁皮石斛试管苗仪器：高压灭菌锅、超净工作台、酒精灯、镊子、剪刀、标签、记号笔、电磁炉、铁锅、烧杯、玻璃棒、天平试剂：MS培养基各种母液、植物生长调节剂原液、琼脂、蔗糖、蒸馏水、0.1mol/L的NaOH、0.1mol/L的HCL其他：温室、塑料大棚、遮阳网、移栽容器。四、实验步骤、现象及记录本次实验分为3个小实验，即试管苗的继代增殖扩繁、试管苗的生根培养、试管苗的驯化与移栽，其操作步骤如下：Ⅰ.试管苗的继代增殖培养基的配制：配方：1/2MS+6-BA2mg/L+NAA0.2mg/L+琼脂7g/L+糖20g/L继代培养基配制母液表名称用量及浓度取量(共8L)

培养基母液母液Ⅰ：大量元素母液Ⅱ：钙盐母液Ⅲ：铁盐母液Ⅳ：微量元素母液Ⅴ：有机成分20ml/L20ml/L10ml/L10ml/L10ml/L160ml160ml80ml80ml80ml植物生长调节剂BANAA1mg/ml0.1mgml8ml16ml其他蔗糖琼脂30g/L5g/L240g80ga.根据需要配制的培养基的量称好所需的琼脂80g,放入容器中，加入适量的蒸馏水（估计加入母液后不超过配制总量8L）置于电磁炉上加热溶解，边加热边用玻棒搅动。b.MS基本培养基配置：（配置前先检查各母液情况，如发现有霉菌和沉淀结晶产生，就不能再使用）。大量元素母液：160ml；微量元素母液：80ml；铁盐母液：80ml；钙盐母液160ml;有机物母液80ml。1mg/L6-BA取8ml，0.1mg/LNAA取16ml。混匀。c.待琼脂完全溶解后，加入规定用量的蔗糖（240g），继续加温并不断搅拌，待琼脂煮透后端离火源，再加入所需用量的母液（可事先取好放于一烧杯中），最后加蒸馏水至所需体积，即8L。注意：a)、调节培养基的酸碱性至pH5.8b)、培养基的分装，配制好的培养基要趁热分装，培养基分装完后，用封口膜封严瓶口，并用棉线扎紧。本次实验中4L分装到150个左右三角瓶，每人3瓶。2.培养基的灭菌培养基分装后应立即置于高压蒸气灭菌锅内进行灭菌。消毒灭菌时，压力表读数约为1.06kgf·cm-2或0.105MPa（可在0.105～0.12MPa间，但不得超过0.14MPa），温度121℃3．试管苗转接（1）准备：提前将经过灭菌的培养基、接种工具、吸水纸、器皿及待转接材料放入超净工作台内，打开紫外灯消毒20min。（2）转接：对菊花、香石竹、马铃薯、月季等节间明显的多茎段嫩枝材料，采取切茎段的方式，茎段长1cm左右，带1-2个茎节，可将茎段垂直插入培养基中，或水平放入培养基表面，一刺激侧芽的萌动；对生姜，草莓等茎间不明显的芽从，采取分离芽从的方式扩繁。4.培养培养室内保持光照时间每天16h，光照强度2000—3000lx，温度（255．观察记载及及结果统计注意检查培养瓶，发生污染要及时清除。定期观察接种材料的生长情况，并作好记录,将结果填入下表;调查时间污染情况生长情况6．增殖率、增殖数的计算增殖率(%)=有新芽的外植体数/接种外植体数平均增殖数=新芽数/接种外植体数Ⅱ.试管苗的生根培养培养基的配制：配方：1/2MS+NAA(0.5mg/L)+AC(2mg/L)+琼脂(7mg/L)+蔗糖（30mg/L）PH5.8a.根据需要配制的培养基的量称好所需的琼脂80g,放入容器中，加入适量的蒸馏水（估计加入母液后不超过配制总量8L）置于电磁炉上加热溶解，边加热边用玻棒搅动。b.MS基本培养基配置：（配置前先检查各母液情况，如发现有霉菌和沉淀结晶产生，就不能再使用）。大量元素母液：160ml；微量元素母液：80ml；铁盐母液：80ml；钙盐母液160ml;有机物母液80ml。1mg/L6-BA取8ml，0.1mg/LNAA取16ml。混匀。c.待琼脂完全溶解后，加入规定用量的蔗糖（240g），继续加温并不断搅拌，待琼脂煮透后端离火源，再加入所需用量的母液（可事先取好放于一烧杯中），最后加蒸馏水至所需体积，即8L。2.培养基的灭菌培养基分装后应立即置于高压蒸气灭菌锅内进行灭菌。消毒灭菌时，压力表读数约为1.06kgf·cm-2或0.105MPa（可在0.105～0.12MPa间，但不得超过0.14MPa），温度121℃3．试管苗转接（1）准备：提前将经过灭菌的培养基、接种工具、吸水纸、器皿及待转接材料放入超净工作台内，打开紫外灯消毒20min。（2）将株高在2.5-3cm以上的大苗接种到生根培养基中，若为丛生苗，需切割分成单苗后再接种；将其余小苗转接到继代培养基中继续扩繁，接种方法同基地培养。4.培养培养室内保持光照时间每天16h，光照强度2000—3000lx，温度（255．观察记载及及结果统计注意检查培养瓶，发生污染要及时清除。定期观察接种材料的生长情况，并作好记录。将结果填如下表：调查时间株高/cm根长/cm根数生长情况备注（包括污染率%）第天第天第天第天6．生根率、生根数的计算生根率=(生根插条数/插条总数)×100%。注意事项：①切割茎段时注意保留腋芽，茎段插入培养基时不能淹没茎节，以免影响腋芽萌发。②芽从分割时，若芽太小，可切成芽从小块转接，芽苗较大，可分割成单芽转接。③培养基配制前应根据培养基的配方及配量，在按基本培养基各种母液的用量及植物生长调节剂母液的浓度，准确计算各种培养基所需各种母液的取量。培养基配制过程中在取量时应做好标记，以免重复或遗漏。尤其在配制培养基种类较多时，更应复核数据，准确取量。④生根培养基和续代培养基要分别标注清楚，切不可混淆。转接时将两种培养基摆放在超净工作台内的不同位置上，以免拿错。⑤根据需转接的试管苗的生长情况，确定生根培养基和续代培养基的配量，转接时要尽量利用材料，选2.5-3cm的大苗进行生根，其余小苗和剪下的过长茎段转入续代培养基中进行扩繁，不要造成浪费。⑥严格按照无菌操作要求，控制污染。Ⅲ、试管苗的驯化与移栽试管苗的驯化将已经生根需要移栽的试管苗移至温室或塑料大棚，先不打开瓶口或封口膜，在自然光照下炼苗3—5d，让试管苗接受强光的照射和变温处理，促使其健壮生长。但应注意防止培养瓶内温度过高，超过30观察幼苗茎秆增粗、颜色加深，叶片增绿，根系延长并由黄色变为黄褐色，即可进行下一步幼苗移栽。基质准备选用珍珠岩：蛭石：草炭土（或腐殖土）=1：1：0：5，也可用沙子：草炭土（或腐殖土）=1:1，混合搅匀，然后将基质装入育苗盘或营养袋、花钵中，用50％多菌灵800倍、或75％百菌清800倍、0.3％-0.5％高锰酸钾溶液喷淋消毒，有条件的可采用高温湿热灭菌。幼苗移栽栽前，先将基质浇透水，并用一个筷子粗的竹签在基质中开一穴，然后再将植株种植下去，最好让根舒展开，并防止弄伤幼苗。种植时幼苗深度应适中，不能过深或过浅，覆土后需把苗周围基质压实，也可只将容器摇几下待基质紧实即可，以防损伤试管苗的细弱根系和根毛。移栽时最好用镊子或细竹筷夹住苗后再种植在小盆内，移栽后需轻浇薄水，再将苗移入高湿的环境中，保证空间湿度达90%以上。在移栽过程中，注意将种球稍微露出（球茎的1／3要露出基质表面），否则种球就会硬化，影响以后的生长发育。移栽时基质不要压得过实，尽可能让子叶的排列方向保持一致，以保证充分受光，保持株型整齐美观。小苗不宜栽得过深，否则会延迟花期。但埋得过浅会使主根不能正常下扎生长，同时植株也缺乏稳定性。4．移栽后管理整个操作过程应在遮荫环境下进行，否则幼苗会暂时缺水萎蔫，极大影响以后花蕾的生长发育。移栽后夜间温度保持在17至19℃，最大光照强度不要超过20000勒克斯。移栽后立即浇水（可以和预防性喷药一起进行），用1000倍的多菌灵或800倍的百菌清将基质一次性浇透，以免由于移苗引起感染，用药量要保持适中，防止产生药害。通过灌溉补充施肥，所用肥料和配方与发芽期相同。移栽后3至5天内，注意遮阳，最大光照强度不超过20000勒克斯。3至5天后根系基本稳定在基质中，这时可以将遮阳网去掉，使小苗接受光照。在移苗初期，保持夜间温度在18℃左右，一旦根长出后降低夜间温度到17℃，如果根系已经充满了整个花盆，则可以降低夜间温度到14至16观察记载及结果统计定期观察幼苗生长情况，并做好记录，将结果天如下表;调查时间植株生长情况（包括株高、出叶数）管理措施（温度、湿度、光照、追肥）第天第天第天第天6.计算移栽成活率移栽成活苗数移栽成活率（％）=——————————×100移栽苗数五、实验讨论及思考题解答1.哪些因素影响试管苗的生根率？影响试管苗生根的因素主要有：（1）植物材料各种植物种植成活的难易程度不同。同样的，不同的植物、不同的品种、同一植物的不同部位和不同年龄对生根都有决定性的影响。生根难易还与母株所处的生理状态有关，因为取材季节和所处环境条件均有影响。一般的，试管苗生根和扦插苗生根是一样的，即扦插生根容易的植物，试管苗生根也容易；扦插生根困难的植物，试管苗生根也困难。比如，月季等扦插生根比较容易，试管苗也比较容易。不同植物生根的规律是：成年的比幼年的生根难，木本植物比草本植物生根难。试管苗一般都比较幼嫩，但是有些试管苗在培养瓶中生长时间长，茎木化程度比较高，这类苗不容易生根。生长旺盛幼嫩的试管苗容易诱导生根。（2）基本培养基试管苗生根是一个从异养状态进入自养状态的一个变化。利用根系来吸收营养和水分是植物体的一种本能。在培养基中有高浓度的营养元素，特别是糖能满足的情况下，试管苗产生依赖性而不易生根，所以减少培养基中的营养成分和糖的含量即可刺激生根。试管苗生根大多数使用低浓度的MS培养基，其中经常使用1/2MS和1/3MS培养基。不同植物对培养基的要求也不同。在无籽西瓜生根中，降低无机盐浓度，有利于生根，而且根多而粗壮，发根也快，加铁盐则更好。糖的浓度一般用2%,有些植物在无糖培养基上也能生根。培养基中的其他成分也和生根有关，有机成分中的维生素B1，维生素B6，维生素B12都有利于生根。培养基的pH值对试管苗的生根也有一定的影响。因此需要求一定的pH值范围，一般在5.0—6.0。据报道，pH值显著影响小萝卜幼苗切后侧根的形成，pH为3.8时，侧根原基为为每平方厘米60条，pH为5.8时则降为每平方厘米18条。水稻离体种根生长，随pH值由3.3升高至5.8而加快。（3）植物生长调节物质生长素有促进生长的作用，它一方面使细胞壁疏松，增加可塑性，促进了细胞的纵向伸长；另一方面生长素又促进了蛋白质等物质的合成，从而增加了原生质体的量。生长素中主要有吲哚乙酸（IAA）、萘乙酸(NAA)和吲哚丁酸(IBA)。这三种生长素一般都能有效促进生根。但不同种类的植物对生长素的种类和浓度的要求也不同。使用不同种类的生长素，不但影响生根的数量，而且影响生根的质量。一般用IAA诱导生成的根比较细长，NAA诱导生成的根比较短粗，而IBA诱导的根则介于二者之间。生根与生长素的浓度有关，生长素浓度越高，根越向短粗方向发展，进一步增加生长素的浓度，超过一定极限，则引起愈伤组织化，影响根的形成和生长。植物生长调节物质的使用方法有2种:一种是将适宜浓度的生长素预先加入到培养基中，然后将无根的试管苗接种上使其诱导生根；另一种是在无菌条件下将五根苗的茎段剪下来，用一定浓度的无菌生根溶液浸泡1~2小时后，再接种到不含激素的培养基中培养生根。（4）培养条件温度:试管苗在试管内生根，或在试管外生根，都要求一定的适宜温度，一般在16℃—25℃莓继代培养芽的再生是32℃，生根是28℃最好，16℃时根长增加5mm—8mm，根数为5条，而28℃时根长可增加光照:光照强度和光照时间对发根的影响十分复杂，结果不一。一般认为生根不需要光照。例如，试管苗转入生根培养基后，先进行一周左右的暗培养，再转入正常关照培养，有利于根的形成。但是暗培养影响上部植物的生长，不利于培养壮苗。若在生根培养基中加入0.1%-0.3%的活性炭，不仅使生根处于较暗的条件下，而且还能吸附一些