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植物组织培养实验基本步骤

植物组织培养实验基本步骤

一、母液的配置

1、MS 大量元素母液的配制

一般将大量元素配制成 10 倍的母液,使用时再稀释 10

倍 。 按 照 配 方 表 中 用 量 依 次 分 别 称 取 扩 大 10 倍的:

NH4NO3 、KNO3 ,KH2PO4 、MgSO4.7H2O 、CaCl2.2H2O

的量,所有药品称取完毕后用蒸馏水逐个溶解,待全部溶解

后,最后定容至 1000ml,转入 1000ml 细口试剂瓶中,贴上

标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制人姓名,

置于 4℃冰箱中保存备用。

2、MS 微量元素母液的配制

一般将微量元素配制成 100倍的母液,使用时再稀释 100

倍。按照配方表中用量分别依次称取:MnSO4 •4H2O、

ZnSO4•7H2O 、H2BO3 、NaMoO4•2H2O、 CuSO4•5H2O、

CoCl2•6H2O 扩大 100 倍的量,用蒸馏水逐个溶解,待全部

溶解后,用容量瓶定容至 1000ml,转入 1000ml 细口试剂瓶

中,贴上标签,注明母液名称、放大倍数、配制日期、配制

人姓名,置于 4℃冰箱中保存备用。

3、MS 铁盐母液配制

一般将铁盐配制成 100 倍的母液,使用时再稀释 100 倍。

按照配方表中用量分别称取扩大 100 倍的:FeSO4•7H2O 和

Na2•EDTA•2H2O 的量,把 FeSO4•7H2O 和 Na2•EDTA•2H2O

分别置于 200ml 蒸馏水中,加热并不断搅拌使之溶解(磁力

搅拌器,边加热,边搅拌)。保持加热,把 FeSO4 溶液慢慢

倒入 Na2•EDTA 溶液中并不断搅拌,接近沸腾时停止加热,

待溶液冷却后加蒸馏水到最终容积 1000ml,置于棕色细口瓶

中,用力振荡 1~2min,贴上标签,注明母液名称、放大倍

数、配制日期、配制人姓名。在室温下避光保存一段时间令

其充分反应后,再置于 4℃冰箱中保存备用。

4、MS 有机化合物母液的配制

一般将有机化合物配制成 100 倍的母液,使用时再稀释

100 倍。按照配方表中用量分别称取扩大 100 倍的:肌醇、

维生素 B1、烟酸、甘氨酸、维生素 B6 的量,用蒸馏水依次

溶解并定容至 500ml 后,转入 500ml 细口试剂瓶中,贴上标

签,注明母液名称、配制日期、配制人姓名,置于 4℃冰箱

中保存备用。

二、植物激素的配置

常见激素:二氯苯氧乙酸(2,4-D)、 萘乙酸(NAA)、

吲哚乙酸(IAA)、 吲哚-3-丁酸(IBA)、 激动素(6-糠氨

基嘌呤、 KT)、 6-苄氨基嘌呤(6-BA)、 赤霉素(GA3)、

1、生长素类:

(1)生长素类在组织培养中的主要作用是:诱导细胞

的分裂和根的分化,诱导愈伤组织

(2)常见生长素:二氯苯氧乙酸(2,4-D)、 萘乙酸

(NAA)、 吲哚乙酸(IAA)、 吲哚-3-丁酸(IBA)。 NAA、

IAA、IBA 被广泛用于生根,2,4-D 有利于愈伤组织的诱

导和生长。IAA 容易光解,注意用棕色试剂瓶保存,保存时

间不要太久。

(3)溶解方法:用少量 1mol/L NaOH 或 95%酒精预

溶解,再加蒸馏水定容,以前者为好。

(4)保存:配成一定浓度后,冰箱冷藏保存

2、细胞分裂素

组织培养中,细胞分类素主要促进细胞分裂和由愈伤组

织上或器官上分化不定芽。细胞分裂素常常与生长素相互配

合,用以调节细胞分裂,细胞伸长,细胞分化和器官形成。

(1)常用的细胞分裂素有: 6-苄氨基嘌呤(6-BA)、

激动素(6-糠氨基嘌呤、 KT)、 玉米素(ZT)、 噻二唑苯基

脲( thidiazuron、 TDZ )

(2)溶解方法:用少量(1ml)1mol/L HCL 预溶解,

再加蒸馏水定容。

(3)保存:配成一定浓度后,冰箱冷藏保存

3、赤霉素(GA3)

(1)溶解方法:用少量 95%酒精预溶解,再加蒸馏水

定容。

(2)保存:配成一定浓度后,冰箱冷藏保存

(3)赤霉素易溶于水,但溶于水后不稳定,容易分解

(4)灭菌:高温易分解,要过滤灭菌

4、脱落酸

(1)溶解:易溶于 NaHCO3 溶液、氯仿或丙酮。

(2)保存:具有热稳定性,但容易发生光解。配成一

定浓度后,冰箱冷藏保存

三、培养基的制备与灭菌

(一)培养基的制备

1、将所需的各种母液和植物激素按顺序放好,将洁净的

各种玻璃器皿等放在指定位置。

2、取烧杯一个内盛 200ml 蒸馏水,按照培养基配方所需

量依次取母液和植物激素加入烧杯,搅拌,按相应培养基称

量蔗糖和琼脂,并添加到烧杯中,在电炉上加热待琼脂完全

融化后加蒸馏水定容至所需体积。

3、充分混合后,用 1mol/LNaOH 和 1mol/LHCl 调节培养

基的 pH 为培养基要求 pH 值。

4、趁热把培养基分装到广口瓶中。封好瓶口。待灭菌。

(二)培养基的灭菌

灭菌温度及灭菌时间:121℃(1.06kg/cm2)下灭菌 20 分

钟。(如是实验所用菌材灭菌,如无菌水及器械,则是 121℃

(1.06kg/cm2)下灭菌 30 分钟)

1、检查灭菌锅外层锅内水位,水量过少时应加水。把分

装好的培养基放入灭菌锅的消毒桶内。

2、盖上锅盖,注意按照说明操作并确定已盖好,设置好

温度和时间参数,开启电源加热灭菌。

3、灭菌时间到后,先切断电源,让灭菌锅内温度自然下

降,待灭菌锅压力表指针降到 0 时,打开排气阀,旋松螺栓,

开启锅盖,取出已灭菌的培养基。

4、刚灭过菌的培养基成液体状,取出时不要用力摇动,

否则会导致部分培养基沾附在瓶壁。放置在水平桌面上自然

冷却。在室温下放置 1-2 天,观察有无微生物生长,以确定

培养基是否彻底灭菌。经检查没有杂菌生长的方可使用。

四、无菌操作技术和接种

1、接种前,用 75%酒精棉球擦拭超净工作台台面,将培

养基及接种用具放入超净工作台台面,打开超净工作台紫外

灯及接种房间紫外灯,照射约 30min,然后关闭紫外灯。打

开房间换气扇及微开超净工作台的玻璃挡板,通风 20min 后,

即可进行无菌操作。(此步由专人统一负责)

2、接种室灭菌过程中同时对外植体进行表面灭菌。先将

接种材料在流动的自来水下涮洗干净,吸干水份后切成大约

70mm 长的片段放进 500ml 烧杯中,用蒸馏水冲洗 2 次,倒

掉蒸馏水后倒入 0.1%的升汞水消毒,将材料淹没浸泡约 10

分钟(期间用镊子搅拌几次)。

3、把在消毒液中的接种材料转移到超净工作台上。用无

菌镊子将已完成灭菌的接种材料转移到烧杯中,用无菌水清

洗 3 次,每次不少于 1 分钟,洗时不断摇动烧杯以确保完全

除去消毒液。

最后一次清洗后转移到无菌托碟上,将接种材料切成一

定大小(花托 0.5cm2、茎段 0.5-1cm)。

4、取下培养瓶的盖子用火烧灼瓶口。用镊子将外植体轻

轻插入到琼脂上,立即盖上盖子。

5、操作完后将镊子等器械浸入 75%酒精中。操作器械需

要在每次使用前消毒一次。方法是将浸于酒精中的器械取出

后置于酒精灯火焰上充分灼烧,待冷却后方可使用。

6、将培养瓶放到培养箱里,在要求温度下培养,观察记

录。

植物组织培养操作的过程

一 生产环境

1 工作人员进入组培室必须穿工作服,包括更换拖鞋、

穿白大褂,接种人员还要带帽、带口罩。

2 所有人员在组培室内不准高声喧哗、打闹。

3 工作期间,各生产房间要关闭房门,尤其是接种间;

工作人员出入要随手关门。

4 各种生产用品要安固定的位置排放整齐,不可乱拿乱

放。

5 工作过程中所产生的垃圾要及时清理,尤其是接种间,

其内垃圾停留时间不得超过 4 小时。

二 接种程序

1. 准备工作:接种人员在正式接种之前要做好准备工作,

包括准备酒精灯、新洁尔灭、灭菌用脱脂棉以及准备接种工

具、分取培养基、接种用苗和工作台灭菌等。

·酒精灯用工业酒精作燃料,而非 75%酒精。

·工作台上用的新洁尔灭浓度是 0.1%,而非 0.01%。

·工作台灭菌包括两步:一是上台前用紫外灯照射 30 分

钟,二是正式接种前再用新洁尔灭仔细擦一遍。

·培养皿的取放:从布包里取培养皿时,一定要注意,手

不能接触培养皿的边沿,同时要尽可能减少与培养皿的接触

面,一般规定只能用双手的拇指和食指取放。

·接种工具灭菌也分两步,一是用灭菌布包裹好,在高压

锅里灭一次,这一步由灭菌人员负责完成;二是在工作台上,

从布包里取出后,先用酒精擦拭一下,再放在酒精灯火焰上

灼烤一遍,其要求是工具的每一点在火焰上灼烤时间不得少

于 5 秒钟。在工具灭菌之前,工作人员的手部,包括手腕,

都要用酒精仔细擦拭一遍。

2 接(转)苗:包括取苗、切苗和接苗三步。

·取苗:先解开培养瓶的瓶盖(封口膜),如果不能一次取

出其内的全部材料,要先把封口膜(瓶盖)口对者风源放在

酒精灯的左前方,然后把瓶口在酒精灯上烤 7~10 秒;正式

取苗时,瓶口不要斜向外;一次取苗不可太多,以免风干。

·切苗:培养皿放在离风窗 10~20 厘米处,不可太往外;

镊子和手术刀都不可太热,最好是凉的,且在操作过程中,

刀和镊都要培养皿斜上方操作,不可在其正上方操作;在切

苗过程中产生的垃圾可堆放在培养皿内的一侧位置上,若非

迫不得已,不可弄到培养皿外。

·接苗:培养瓶盖(或封口膜)的放置方法和及瓶口灼烤

方法与取苗时的相同,烤完瓶口后,要先倒掉瓶内多余的水

分,然后在接苗;接苗时,镊子最好不要与瓶口接触,一瓶

内一般接 5~6 棵苗,不要放得太多;组培苗在瓶内要排放

均匀、整齐、美观。

·封口、记录:封口膜要及时捆绑,其松紧度以用手转不

动为准;下台前要把品种代号、培养基类型、个人编号以及

接种日期标示到瓶上。离开之前还要把工作台收拾干净,把

接种过程中产生的垃圾清理掉,台上的物品也要摆放整齐。

三 组培苗的管理

1.瓶苗要整齐的摆放在自己的组培架上,不可乱放。

2.接种人员每天都要统计自己的接种数量,包括转前瓶数

和转后瓶数。

3.值日人员要定时开灯、关灯,保证组培苗有足够的光照

时间,但也不可过长,以每天 14 小时左右为宜。

四 接种用具的清洗

1.洗刷培养瓶、培养皿:第一步:把培养瓶培养皿放入洗

洁净溶液里,先用毛刷清洗内部,再用钢丝球把外面的字清

洗掉。第二步:把他们再用清水冲洗 3-5 遍。第三步:把瓶

内的积水倒掉,倒放在准备台,准备台上要先放一层纱布。

这一步的清洁标准是:凉干的瓶壁(器皿)内外无明显的斑

点、污迹。

2.洗涮镊子:用 洗洁精浸泡五分钟,用钢丝球打磨一下然

后放入清水冲洗三遍。

五 灭菌

1.对污染苗灭菌:一经发现就随即灭菌处理,大量的进行

高压灭菌,少量的加入工业酒精在室外进行处理。

2.室内空气灭菌:每四周用高锰酸钾和甲醛对室内空气灭

一次菌。

3.室内地面:每 2-3 天用新洁尔灭拖一遍地。

4.卧式和手提式高压灭菌锅使用程序:严格按使用说明书

操作。

“植物的组织培养技术”知识归纳及试题

例析

广东省揭东县登岗中学 曾鹏光

一、知识归纳

1、菊花茎的组织培养与月季的花粉培养的比较

选材→材料消毒→接种和培养→

筛选和诱导→移栽→栽培选育

2、植物激素(生长素和细胞分裂素)对实验结果的影响

根据生长素作用的两重性:低浓度促进生

长,高浓度抑制生长,甚至杀死植物

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