两品种桃果皮花青苷积累差异及光照调控机制
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目录
1绪论
1．1花色苷的生物学意义
1．2花色苷的生物合成
1．2．1花色苷的合成途径
1．2．2花色苷合成的调控机理
1．3花色苷的转运
1．3．1 GST介导花色瞽转运
1．3．2膜转运蛋白和膜囊泡介导花色苷转运
1．4光调控花色苷生物合成
1．4．1光对花色苷积粟的调控效应
1．4．2光受体
1．4．3光信号转导因子
1．5桃花色苷积累及调控研究进展
1．6研究的目的和意义
2基于转录组SNP挖掘的两个桃品种花色苷代谢及调控基因的SNP分析
2．1引言
2．2材料与方法
2．2．1实验材料
2．2．2 DNA和RNA提取
2．2．3文库构建和转录组测序
2．2．4组装和SNP calling
2．2．5基因克隆
2．3结果与分析
2．3．1转录组测序
2．3．2 De novo组装
2．3．3 SNPs预测
2．3．4验证所选基因中预测的SNPs
2．3．5 Trinity-GATK(PE150)下桃转录组中SNPs分析
2．4结论与讨论
3参与桃果实花色苷转运的PpGST1的功能鉴别
3．1引言
3．2材料与方法
3．2．1实验材料
3．2．2花色苷含量测定
3．2．3 DNA和RNA提取以及cDNA合成
3．2．4实时定量PCR分析
3．2．5载体构楚及农杆菌转化
3．2．6烟草双荧光素酶
3．2．7瞬时表达
3．2．8拟南芥转基因
3．2．9亚细胞定位分析
3．2．10系统进化树分析
3．3结果与分析
3．3．2 PpGST1功能分析
3．3．3烟草叶片和桃果实中瞬时过表达分析
3．3．4基于VIGS方法的PpGST1基因功能分析
3．3．5 PpGST1启动子功能元件分析
3．3．6 PpMYB10．1转录因子对PpGST1启动子的调控效应
3．4结论与讨论
4紫外光调控桃果实着色及品种间光敏感性差异机制
4．1引言
4．2材料与方法
4．2．1实验材料
4．2．2果实色差分析
4．2．3花色苷含量测定
4．2．4 RNA提取和实时定量PCR(RT-qPCR)分析
4．2．5文库构建和转录组测序
4．2．6系统进化树分析
4．2．7结构基因与转录因子的相关性分析
4．3结果与分析
4．3．1不同光处理对不同品种桃果实着色及花色苷含量的影响
4．3．2转录组测序
4．3．3紫外光照(UVA／UVB)处基下桃果实中差异表达基因分析
4．3．4花色苷生物合成相关基因表达模武分析
4．3．5光受体和光信号转导相关基因的表达模式分析
4．3．6与花色苷生物合成相关候选转录因子的预测
4．4结论与讨论
5PpHY5介导了UVA和UVB诱导的桃果皮花色苷合成
5．1引言
5．2材料与方法
5．2．1实验材料
5．2．2果实色差分析
5．2．3花色苷含量测定
5．2．4 RNA提取和实时定量PCR(RT-qPCR)分析
5．2．5转录组测序
5．2．6载体构建及农杆菌转化
5．2．7烟草双荧光素酶
5．2．8拟南芥转基因
5．2．9亚细胞定位分析
5．2．10系统进化树分析
5．3结果与分析
5．3．1不同紫外照射下桃中花色苷合成基因转录水平变化
5．3．2紫外处理下PpHY5和PpCOP1．1表达模式的变化
5．3．3 PpHY5和PpCOP1．1参与白光下花色苷的合成
5．3．4光受体PpUVR8．1和PpCRY1功能鉴定
5．3．5 PpUVR8．1和PpCRY1亚细胞定位
5．3．6 HY5同时参与了UVA和UVB诱导的花色苷积累
5．3．7 PpHY5能激活花色苷生物合成相关基因及自身的转录
5．3．8转录组数据共表达网络分析和模块识别
5．4结论与讨论
6小结与展望
6．1小结
6．2展望
6．2．1紫外光调控花色苷合成
6．2．2花色苷转运
参考文献
作者学习经历及在学期间所取得的科研成果
相关知识
解析桃果皮/花颜色调控机制，为“纯色”桃品种遗传改良奠定基础
光照对植物花色素苷生物合成的调控及机制
植物类胡萝卜素和花青苷代谢响应光信号的转录调控机制
南京农业大学梨课题组揭示bZIP转录因子多途径调控光诱导的花青苷合成新机制
浙江大学滕元文/白松龄团队在光诱导梨果皮花青苷合成调控机制研究上取得进展
4种红肉苹果提取液花青苷含量及体外抗氧化研究
山东农业大学揭示乙烯和茉莉酸协同调控苹果花青苷合成机制
高等植物花色苷生物合成调控的研究进展
籽银桂’果实花青苷成分与果皮颜色分析
激素和环境信号调控苹果花青苷生物合成的机理研究
网址: 两品种桃果皮花青苷积累差异及光照调控机制 https://m.huajiangbk.com/newsview667950.html
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