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一种利用AM真菌提高月季组培苗炼苗成活率的方法与流程

花匠小妙招
2024-12-31 07:47

一种利用AM真菌提高月季组培苗炼苗成活率的方法与流程
一种利用am真菌提高月季组培苗炼苗成活率的方法
技术领域
1.本发明属于植物繁育技术领域，特别是一种利用菌根真菌提高月季组培苗炼苗成活率的方法。

背景技术：

2.月季别名长春花、月月红，为蔷薇科蔷薇属植物。中国是月季的原产地，经过世界育种家的长期选育，逐渐育成具有4万余品种月季。因花艳丽多彩、花形优美，有花中皇后的美誉。月季具有丛植、蔓性、微型等各种类型，既可作花境的花边、片植或丛植，也可以作地被、花架和盆花摆放，应用十分广泛。
3.月季品种更迭较快，但目前我国的月季繁育技术还是比较落后，主要以扦插和嫁接为主。扦插多以土壤为培养基，但是其存在扦插成活率低，起苗操作困难、易伤根系，扦插密度低造成管理成本高等诸多问题。嫁接受原材料限制较大，难以大量快速繁殖。在实际生产上，扦插和嫁接的成活率受到月季类型、品种、环境、技术等因素制约，对于新优月季品种的快速推广上，这些方法限制了月季新品种的繁育速度，不能快速满足市场的需求。
4.月季组织培养是简单、便捷、快速的繁育技术，可降低月季生产成本、提高生产速度与产品质量。其中在cn201611105030.4一种月季快速繁殖方法中，通过外植体的制备、外植体的消毒、诱导培养、增殖培养、生根培养过程中培养基的配方和激素配比以及培养过程中温湿度、光照的设置，移栽步骤及基质配比优化，提高月季的繁殖率，可以有效提高月季的繁殖速度实现月季的工厂化育苗，但操作复杂，且还需要加入大量激素等，不利于环境友好。cn201410650914.2一种微型月季组培的繁殖方法，通过精选茎段外植体和优化培养基的配方，结合光照等技术，得到一种增值系数和成活率高的微型月季组培方法，其中未额外关注炼苗环节的成活率。虽然目前利用组培技术扩繁月季新品种能有效提高繁殖系数和速度。但实际生产过程中，炼苗环节的成活率往往较不稳定。在“丛枝菌根真菌对切花月季和切花菊生长及温度胁迫耐受性的影响，孔佩佩”文章中研究了丛枝菌根真菌能够改善寄主植物矿质营养，促进生长发育，缓解干旱、盐碱和温度胁迫等多种逆境对植株造成的伤害，同时也能提高多种抗病虫害能力，筛选出透光球囊霉、幼套球囊霉这两种amf是对切花月季生长的促进效果最好的菌种，根内球囊霉是对切花菊效果最佳的菌种。而在发明人的研究菌根真菌在月季组培苗炼实验中，含有的透光球囊霉、幼套球囊霉的栽培基质，对提高月季组培苗炼苗成活率，数据有提升空间。
5.因此，如何使am真菌与月季根系形成互惠共生体，促进根系生长和营养元素吸收，缩短缓苗期和提高炼苗成活率，还需要进一步研究解决。

技术实现要素：

6.针对背景技术中的问题，本发明提供了一种利用am真菌提高月季组培苗炼苗成活率的方法。解决了月季炼苗过程中成活率低的难题，为植株的存活、快速复壮和生长提供良好基础。
7.为了解决上述技术问题，本发明采用的技术方案为：
8.采用的技术路线为：采集自然状态下生长健壮的月季根际土壤，分离am菌根真菌，筛选出促植物根须生长较为显著的菌种，分离纯化后稀释接种到组培月季无菌基质上，得到混合基质体系。
9.(1)采集长势良好月季的根部土壤样品，从土壤中对am真菌菌种的分离与纯化，进行扩繁培养，制备的月季丛枝菌根真菌菌剂。
10.具体为：采用湿筛法分离月季根际土壤中的丛枝菌根真菌的成熟孢子，得到丛枝菌根真菌孢子，将丛枝菌根真菌孢子接种到植物幼苗的根系上扩繁，盆苗在培养基质上生长3-4个月，连根拔起，去掉植物地上部分，将根切碎成小段与根际培养基质混匀，得到丛枝菌根真菌菌剂。每10g丛枝菌根真菌菌剂中的孢子数大于300粒。
11.进一步为：根际培养基质是由河沙：草炭：珍珠岩：蛭石：稻壳质量比＝10～15：10～15：1～3：1～3：1～2混合得到。其中含有根际培养基质质量分数1-2％的保水剂(如stockosorb施可保保水剂)，将吸水后的保水剂混合在基质中。种植幼苗的种子在根际培养基质中每平方米用量25-30粒。将根切碎成小段与根际培养基质混匀，其中根段质量占根际培养基质质量的4～12％。
12.进一步，月季根际am菌为透光球囊霉、幼套球囊霉、摩西球囊霉中的一种或几种混合。优选透光球囊霉和幼套球囊霉混合使用。
13.所述植物幼苗为高粱或玉米。
14.(2)先将月季丛枝菌根真菌菌剂和微生物菌剂按质量比100～120:0.5～1混合，混合均匀后得到栽培基质。
15.其中，经过大量实验筛选得到微生物菌剂由长枝木霉菌、细黄链霉菌按质量比8～10:1混合得到，与月季丛枝菌根真菌菌剂复配使用，显著提高月季炼苗过程中成活率，使得小苗对环境的抗逆性(耐旱性)、抗病性得到了显著的提升。可能是月季丛枝菌根真菌菌剂、长枝木霉菌和细黄链霉菌之间相互刺激产生新的分泌物，促进植物的生长以及提高植物抗病性。更加促进栽培基质中am真菌和月季根系形成互惠共生体，促进根系生长和营养元素吸收，缩短缓苗期和提高炼苗成活率。
16.还可根据需要在栽培基质中加入营养物质成分。如硫酸镁、磷酸二氢钾、硫酸铵、磷酸二氢铵、硝酸钙、硝酸钾、酒石酸铁、硼砂、硫酸锰、硫酸锌、硫酸铜、钼酸钠、腐殖酸钠、碳酸钾、柠檬酸中两种以上物质混合得到，营养物质加入量为月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质质量的0.1～3％。
17.(3)月季组培：将剪取月季茎尖用自来水冲洗10min，用70wt.％酒精消毒30s，再用0.1wt.％生汞(滴入数滴吐温-80)5min，无菌水冲洗3-4次。将幼芽至培养基(1)上，培养7天左右，基部产生愈伤组织，顶芽开始生长
→
等芽苗长出5-7片叶，将其切成带1-2个叶片的茎段，转入培养基(2)进行继代培养。四周继代培养一次。
→
将继代增殖无根苗切成1.5cm茎段移植生根培养基(3)。
→
待根长1cm时，即可将其移栽到步骤(2)的栽培基质进行炼苗；
18.其中，芽分化培养基(1)：ms+ba0.75 mg/l+iaa0.25mg/l+naa0.2mg/l+zt0.1 mg/l+蔗糖5wt.％；
19.继代培养基(2)：ms+ba0.75 mg/l+iaa0.75 mg/l+naa0.2 mg/l+zt0.1 mg/l+蔗糖3wt.％。
20.生根培养基(3)：1/2ms+iaa1.0 mg/l+iaa0.75 mg/l+naa0.1 mg/l+zt0.1 mg/l。
21.上述培养基ph5.8，培养温度均为25℃，光照12h，光照度2000lx。成分均是市售产品。
22.(4)将组培小苗移植到到步骤(2)栽培基质中进行栽培，在温度为20～38℃，相对湿度为60％～99％条件进行培养。
23.与现有技术相比，本发明的有益效果为：本发明采用长枝木霉菌、细黄链霉菌和am真菌共同生活在植物根围，相互促进、相互协同后，更有效发挥生理生态功能，促进月季植物的生长发育，增强其促生防病功能，得到的组合菌剂在月季育苗生长方面提供了参考依据，并具有广阔的应用前景。
附图说明
24.图1为新伊继代培养实物图；
25.图2为浪漫宝贝继代培养实物图。
具体实施方式
26.为了进一步理解本发明，下面结合实施例对本发明优选实施方案进行描述，但是应当理解，这些描述只是为进一步说明本发明的特征和优点，而不是对本发明权利要求的限制。
27.1、am真菌的提纯与鉴定
28.2019年10月，选择常州紫荆公园国际月季园多年生地栽月季品种摩纳哥公主(rosa“princesse de monaco”)，去掉地表杂物，将铁锹用70％酒精擦拭消毒后，沿月季根际周围往下挖，尽量将整株连根带土挖出，去除地上部分，连根带土取大约2kg放入塑料袋中，外套布袋带回实验室分离。
29.取月季包括须根在内的50g根际土壤放在食物搅拌机，加入600ml水，高速旋转3-5s。将打碎的材料立即倒出，依次通过为24目(孔径0.8mm)、65目(孔径0.25mm)、300目(孔径0.055mm)的土壤标准筛，大部分砂砾残余物留在食品搅拌机杯中。用流水冲洗每层筛子，直至流出的水是清水。24目土壤标准筛内残余物转移到大培养皿中，用体视显微镜观察。300目土壤标准筛内残余物转移至50ml含有20/60％蔗糖梯度离心管中，3000转/min离心2-3min，取上层清液迅速倒至较小的筛子，用水冲洗小筛中的上层清液遗留物1-2min后转移至玻璃培养皿，在体视显微镜下观察。
30.在体视显微镜下，将湿筛法分离出的外表健康的孢子人工转移到表面皿的自来水中，去除所有的菌丝和碎屑。将表面皿至于培养皿中，放置于4℃下至少存放48h。换水后，再将孢子放置于4℃下24-48h观察，去除不典型孢子。水洗并转移放有灭菌蒸馏水的螺旋口塑料小瓶，放置于4℃左右冰箱中备用。
31.经鉴定，分离出来自球囊霉属的三种am真菌。
32.球囊霉属(glomus tulasne&tulasne)鉴定特征如下：
33.孢子由菌丝顶端膨胀生成，单生或成簇生于无序的菌丝上，某些种的孢子只在孢子果内生成，呈无规则排列或生高度有序的菌丝基质中，有时也可在根内生成。孢子分化时由一层壁分化成几个层，各层的数量、位置和表现型有变化。孢子成熟后孢壁的外层常脱
落，通常最外层是黏液质。孢子内含物和连孢菌丝间的连点孔或开放，或由隔、无定形栓塞、层状壁的最内层，或由层状壁增厚堵塞封闭。菌丝和孢子间的连点有圆筒状、溢缩、漏斗状等不同形态，是本属的重要分类依据。发芽方式：由芽管通过连孢菌丝腔重新发芽生长形成新菌丝。丛枝分支后向顶端逐渐变细。孢内菌丝大多筒状，近入侵点常有卷曲，根内泡囊在根皮层细胞内或皮层细胞间的菌丝顶端生成。
34.月季根际am菌主要有以下三种类型：
35.透光球囊霉(glomus diaphanum)：土壤中单生，无色透明，球形或近球形，80～115μm。孢子壁两层。l1层透明，层状壁，厚3～4.5μm。在melzer’s试剂中呈淡红色；l2无色透明，膜状，小于1μm，与l1一起进入连点，在高渗透溶液中起皱褶。连孢菌丝：无色透明，易断，直或小喇叭形，宽5～8μm，有隔。
36.幼套球囊霉(glomus etunicatum)：孢子棕黄色，球形、近球形至不规则形，直径90～160μmx100～190μm。孢子壁两层。l1透明，厚1～3μm，随着孢子成熟后脱落，幼龄孢子中两层壁也极易分开。l2层状壁，棕黄色，厚4～8μm。连孢菌丝：连点宽6～10μm，连点为孢壁阻塞。
37.摩西球囊霉(glomus mosseae)：孢子果：黄棕或浅褐色。多为不规则形，内含1至多个孢子，200～600μm，有菌丝孢被。孢子：浅黄至黄褐色，幼嫩孢子乳白色。球形、近球形、有时不规则形。孢子壁：3层。l1无色透明，易脱落，厚0.5～1μm，melzer’s试剂中呈粉红色；l2无色透明，厚0.8～1.6μm。l3浅黄色至浅黄棕色，层积壁，厚1.5～3μm，在连点处增厚至6μm。连孢菌丝：宽8μm。连点漏斗形，漏斗底部有厚凹隔。
38.分别将三种am真菌的单孢培养：在塑料盆中播种40-50粒高粱种子，基质为灭菌的沸沙培养基。生长12-15d后将高粱幼苗与培养基质一起倒出，浸没在水中，静置至少30分钟，使根与基质分开。取幼苗，使其根部淋水贴在一起，在体视显微镜吸取1枚新鲜、光亮、饱满的孢子，将孢子放在纠集在一起的根上。转移至预先消毒的穴苗盘中，栽培基质为灭菌的沸沙培养基。接种数量为100-120株。在阴凉处摆放24h后，转移至光照室或温室培养。
39.经单孢培养的盆苗经过温室培养3-4个月，连根拔起，去掉植物地上部分，将根切碎成小段与根际土壤混匀。将根土混合物和灭菌沸沙培养基质1:1混合，装入塑料盆，播种高粱25-30粒/盆。温室培养3-4月。采用打孔器(直径1.5-2.0cm)打孔取样，如在体视显微镜下，镜检孢子数量较少(小于60枚)，重复扩繁培养步骤。
40.2、菌剂扩繁与密度测定
41.复配基质。
42.采用河沙：草炭：珍珠岩：蛭石：稻壳＝10：10：1：1：1的比例混合均匀，保水剂按照1-2％比例(每平方米4-8g)施用量将吸水呈凝胶状保水剂撒在基质上层，将纯化培养的盆苗连根拔起，去掉植物地上部分，将根切碎成小段均匀撒施在基质上层，厚度约3mm左右。播种玉米种子，每平方米用量25-30粒左右。
43.密度测定。
44.种植4-5月后，称取10g基质样品，用水浸泡20-30min。
→
用玻璃棒搅动水溶液，停置2s后缓慢依次倒入为24目(孔径0.8mm)、65目(孔径0.25mm)、300目(孔径0.055mm)的土壤标准筛，使大部分砂砾残余物留在杯中。
→
用洗瓶将筛出物清洗到试管当中。
→
滴加曲利苯蓝染色剂，放入90℃水浴锅加热半小时。
→
将滤液过筛，冲洗筛网上得滤物至培养皿中。
→
在双目显微镜下计数被染色的紫色孢子。
→
如孢子数大于300粒，作为月季丛枝菌根真菌菌剂，用于炼苗基质介质。
45.采用上述方法分别得到透光球囊霉(a)、幼套球囊霉(b)、摩西球囊霉(c)月季丛枝菌根真菌菌剂。
46.在下述实验1基础上，研究月季丛枝菌根真菌菌剂对月季组培苗移栽成活率有显著的影响，其中透光球囊霉和幼套球囊霉混合使用，相比于单独使用以及其它混合的效果要好。
47.月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质由透光球囊霉基质介质和幼套球囊霉基质介质按质量比1:1混合，混合后作为下面实验的月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质。
48.实验1：
49.长枝木霉菌(市售，广州真微生物科技有限公司)和细黄链霉菌(市售，山东诺杰生物科技有限公司)按质量比10:1混合得到微生物菌剂，将月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质(孢子数＞30个/g)和微生物菌剂按质量比100:0.5混合，然后每千克月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质中加入0.4g磷酸二氢钾、0.2g硫酸亚铁，0.3g硝酸铵，0.01g硫酸铜，0.1g氯化钙，搅拌混合均匀后，浇水至含水量为70％，得到栽培基质。
50.实验2：
51.与实验例1相比，区别在于：未加入微生物菌剂，其它操作相同。将月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质和营养成分混合，得到栽培基质。
52.实验3:
53.与实验例1相比，区别在于：未加入长枝木霉菌，其它操作相同。将月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质(孢子数＞30个/g)和细黄链霉菌按质量比100:0.5混合，然后每千克月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质中加入0.4g磷酸二氢钾、0.2g硫酸亚铁，0.3g硝酸铵，0.01g硫酸铜，0.1g氯化钙，搅拌混合均匀后，浇水至含水量为70％，得到栽培基质。
54.实验4:
55.与实验例1相比，区别在于：未加入细黄链霉菌，其它操作相同。将月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质(孢子数＞30个/g)和长枝木霉菌按质量比100:0.5混合，然后每千克月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质中加入0.4g磷酸二氢钾、0.2g硫酸亚铁，0.3g硝酸铵，0.01g硫酸铜，0.1g氯化钙，搅拌混合均匀后，浇水至含水量为70％，得到栽培基质。
56.实验5:
57.与实验例1相比，区别在于：未加入月季丛枝菌根真菌，其它操作相同。
58.长枝木霉菌(市售，广州真微生物科技有限公司)和细黄链霉菌(市售，山东诺杰生物科技有限公司)按质量比10:1混合得到微生物菌剂。将空白基质介质和微生物菌剂按质量比100:0.5混合，然后每千克月季丛枝菌根真菌菌剂基质介质中加入0.4g磷酸二氢钾、0.2g硫酸亚铁，0.3g硝酸铵，0.01g硫酸铜，0.1g氯化钙，搅拌混合均匀后，浇水至含水量为70％，得到栽培基质。
59.空白组：不含月季丛枝菌根真菌菌剂和微生物菌剂。
60.月季组织培养
61.2018年在常州市武进区青阳路恒诺苗圃组培室开展月季组培试验。选择新伊、浪漫宝贝月季品种作为组培材料。剪取月季茎尖约1cm用自来水冲洗5min，用70％酒精消毒
30s，再用0.1％生汞(滴入数滴吐温-80)5min，无菌水冲洗3-4次。将幼芽至培养基(1)上，培养7天左右，基部产生愈伤组织，顶芽开始生长。
→
等芽苗长出5-7片叶，将其切成带1-2个叶片的茎段，转入培养基(2)进行继代培养。四周继代培养一次。
→
将继代增殖无根苗切成1.5cm茎段移植生根培养基。
→
待根长1cm时，即可进行移栽炼苗。
62.培养条件。
63.芽分化培养基：(1)ms+ba0.75mg/l+iaa0.25 mg/l+naa0.2 mg/l+zt0.1 mg/l+蔗糖5％
64.继代培养基：(2)ms+ba0.75 mg/l+iaa0.75 mg/l+naa0.2 mg/l+zt0.1 mg/l+蔗糖3％
65.生根培养基：(3)1/2ms+iaa1.0 mg/l+iaa0.75 mg/l+naa0.1 mg/l+zt0.1 mg/l
66.上述培养基ph5.8，培养温度均为25℃，光照12h，光照度2000lx。
67.4、接种am真菌对月季炼苗的影响
68.将组培小苗移植上述实验1-5栽培基质中，研究栽培基质对月季组培苗移栽成活率、侵染水平、地上部分干重、植物抗逆性等方面的影响。
69.(1)不同培养基对月季组培小苗移栽成活率的影响
70.供试验植物材料为新伊、浪漫宝贝两个月季品种组培生根苗(100株)。栽培基质上述培养基(约3kg)。试验布置于常州武进区礼嘉月季基地玻璃温室内。温度为20～38℃，相对湿度为60％～99％。于移栽后30天调查新伊、浪漫宝贝的移栽成活率；于接种180天内观察am真菌的侵染率。
71.数据见表1.可以看出，采用不同培养基基质对月季组培苗移栽成活率有显著的影响。
72.表1不同培养基对月季移栽成活率的影响
73.序号am真菌新伊成活率(％)am真菌浪漫宝贝成活率(％)实验1a+b96aaa+b93aa实验2a+b89aaa+b86bb实验3a+b93bba+b89aa实验4a+b91bba+b86aa实验5
‑‑
70cc
‑‑
76cc实验6a94aaa92aa实验7b92aab91aa实验8c88aac86aa空白ck62ccck66cc
74.(2)不同am真菌处理对月季组培小苗侵染水平的影响
75.侵染率的测定：选择细而坚韧的根，将根洗干净，用滤纸吸干水分，剪成1cm长的根段，置于塑料瓶中，加入faa固定液浸没根段，固定4小时以上。将根段从固定液中取出，用水冲洗，淋干，放入内有10％koh溶液的烧杯中，水浴锅90℃加热1h。加热结束后，清水漂洗根，控干水分后用曲利苯蓝染色。用镊子将染色根段整齐排列在干净的载破片上，一个载破片放15根，每个样品2个载破片，共计30个根段。在体视显微镜下观察菌根结构。
76.侵染率计算方法：在显微镜下观察侵染情况(如侵入点、菌丝、丛枝、泡囊等)，按照
0、10、20
……
100，以10为一级，逐段打分。例如：没有侵入的菌根结构根段为0，有一半长度有菌根侵染的根段为50。
[0077][0078]
从表2可以看出，所接种的各菌株对月季组培苗的根均有侵染，但侵染水平差异较大。
[0079]
表2不同am真菌处理对月季移栽苗的侵染率
[0080][0081]
(3)不同am真菌处理对月季组培小苗地上部分干重的影响
[0082]
供试验植物材料为新伊、浪漫宝贝两个月季品种组培生根苗。供试菌株为a：透光球囊霉(glomus diaphanum)、b：幼套球囊霉(glomus etunicatum)、c:摩西球囊霉(glomus mosseae)真菌。栽培基质为经过am菌剂扩繁与密度测定的复配基质(孢子数＞30个/g)。栽培容器为直径10cm双色杯。试验布置于常州武进区礼嘉月季基地玻璃温室内。温度为20～38℃，相对湿度为60％～99％。于接种180天内统计地上部分干重。
[0083]
表3不同am真菌处理对月季移栽苗叶面积的影响
[0084]
序号am真菌新伊单株叶面积(cm)am真菌浪漫宝贝单株叶面积(cm)实验1a+b17.46aaa+b16.04aa实验2a+b17.23bba+b15.02bb实验3a+b16.86cca+b17.91aa实验4a+b17.51bba+b14.28bb实验5
‑‑
10.23dd
‑‑
11.30dd空白ck9.73ddck10.29dd
[0085]
表4不同am真菌处理对月季移栽苗地上部分干重的影响
[0086][0087][0088]
(4)不同am真菌处理对月季组培小苗抗逆性的影响
[0089]
供试验植物材料为新伊、浪漫宝贝两个月季品种组培生根苗。供试菌株为a：透光球囊霉(glomus diaphanum)、b：幼套球囊霉(glomus etunicatum)、c:摩西球囊霉(glomus mosseae)真菌。栽培基质为经过am菌剂扩繁与密度测定的复配基质(孢子数＞30个/g)。栽培容器为直径10cm双色杯。以普通栽培介质为试验对照。试验布置于常州武进区礼嘉月季基地玻璃温室内。温度为20～38℃，相对湿度为60％～99％。于接种180天内观察植株苗黑斑病发生情况和植株耐旱情况。
[0090]
黑斑病的调查：将供试月季小苗放在同一块试验田内，试验期间，不使用任何农药，记录试材感病情况，对各个月季品种情况进行调查统计、分析。每次调查都详细观测病叶数跟单株全部叶片，从而计算出病叶率，根据病叶率进行病级划分(如表5所示)根据调查单株发病级数的数量，计算出群体病情指数：
[0091]
表5月季黑斑病级划分标准
[0092][0093]
[0094][0095]
表6不同am真菌处理对月季移栽苗黑斑病的影响
[0096]
序号am真菌新伊病情指数(g)am真菌浪漫宝贝病情指数(g)实验1a+b40.3aaa+b17.2aa实验2a+b51.3aaa+b36.7aa实验3a+b45.9bba+b20.5bb实验4a+b41.8bba+b17.5bb实验5
‑‑
53.8cc
‑‑
30.1bb4ck65ccck38.3aa
[0097]
耐旱性试验：2020年8月初将供试材料移入温室大盆正常栽培管理，8月20日对所有品种进行充分浇水后开始干旱胁迫处理。观测供试材料缺水后出现全株叶片发生干枯卷曲或全株叶片发黄掉落的时间并进行统计，直到该品种所有试材均出现干旱胁迫症状。根据一下公式得出该品种的中致死天数。
[0098][0099]
表7不同am真菌处理对月季移栽苗耐旱性的影响
[0100]
序号am真菌新伊中致死天数am真菌浪漫宝贝中致死天数实验1a+b21.78aaa+b13.57aa实验2a+b20.61aaa+b12.83aa实验3a+b21.07aaa+b13.40aa实验4a+b21.21aaa+b13.51aa实验5
‑‑
18.52bb
‑‑
9.50bb4ck18.20bbck9.41bb
[0101]
结果分析：将组培小苗移植到到混有含有透光球囊霉(glomus diaphanum)、幼套球囊霉(glomus etunicatum)真菌、微生物菌剂的栽培基质中，相互促进，协同提高了组培月季小苗炼苗的成活率，并且使得小苗对环境的抗逆性(耐旱性)、抗病性得到了显著的提升。能观察到am真菌侵染与月季根系形成互惠共生体，促进根系生长和营养元素吸收，使地上部分的叶面积和干重有显著增长。