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分子标记及其在植物遗传育种中的应用(共115页)

1、分子标记及其在植物遗传育种中的应用,1,2021/11/17,遗传标记 (genetic marker) 具有多型性 易于鉴别 与目标基因紧密连锁,性状标记 色泽, 形态 细胞学标记 倒位,易位,G/N/C带 生化标记 同功酶 分子标记 RFLP、RAPD、SSR、AFLP、SNP ,基础- 基因表达 结果 表现型,DNA碱基 序列变异,2,2021/11/17,形态标记,遗传学上稳定、可见的外部特征 -遗传与环境、结构基因与调控基因综合作用的结果。 如穗形、芒长、穗长、粒色、穗形、矮秆、卷叶等。 特点:直观简单 从基因型到表现型存在基因表达、调控、个体发育等环节,表型差异有时难以反映基因型差异。,3,2021/11/17,细胞学标记,染色体数目变异及结构变异,表现在染色体核型(数目、大小、随体、着丝点位置等)和带型(C带、N带、G带等)。 随着分带、细胞原位杂交等研究技术的发展,可在染色体水平揭示更多遗传变异。 特点:直观、快速而经济,但变异十分有限,当染色体数目形态相似时难以分辨。,4,2021/11/17,生化标记贮藏蛋白和同工酶,贮藏蛋白 同工酶 特点:经济、方便、成本较低 结

2、构基因表达产物,对非结构基因无能为力;所检测位点只是基因组一部分;数量有限,有时受发育时期和环境影响。,5,2021/11/17,分子标记,本质是以核苷酸序列作为标记,一般特点: (1)不受季节、环境、基因表达与否的限制; (2)多态性高,存在着丰富的等位变异; (3)数量丰富,多态性遍及整个基因组; (4)表现为“中性”,不影响目标性状的表达,与不良性状无必然的连锁; (5)许多分子标记表现共显性,能鉴别纯合杂合基因型,提供完整的信息。,6,2021/11/17,分子标记的分类(Staub等1996),7,2021/11/17,植物遗传研究中常用的分子标记,RFLP Restriction Fragment Length Polymorphism RAPDRandom Amplified Polymorphic DNAs (DAF, AP-PCR) SSR Simple Sequence Repeat AFLP Amplified Fragment Length Polymorphism,8,2021/11/17,RFLP,原理: DNA 限制性内切酶酶切 电泳 转移到硝酸纤维素滤膜

3、 同位素或非放射标记(如地高辛等)的探针杂交 胶片放射自显影,显示酶切片段大小,9,2021/11/17,酶切:3-5ug DNA,以10U内切酶酶切5小时 电泳:0.6-0.8%琼脂糖胶70V电泳16小时 染色:EtBr染色20分钟 M HCl 20分钟,抽真空,水冼 印迹:加入0.4N NaOH,进行Southern 印迹 冲洗:以2SSC 冼胶,风干,酶切电泳印迹,10,2021/11/17,杂交洗脱,预杂交:将杂交膜放人预杂交液(水、5 HSB、Denhardt)中, 封好后置65温箱中振荡56小时。 杂交:预杂交液中加入标记好的marker和探针,放入杂交膜浸匀。封好杂交盒后,置65温箱中振荡过夜。 洗脱:将膜转入洗脱盒,加入洗脱液65 振荡洗脱两次(15min/次),吸干包好。,11,2021/11/17,放射自显影,将洗脱好的杂交膜置于增感屏上, 于暗室中将 X-光片放于杂交膜上, 再放上另一张增感屏,装人暗袋,并用夹板夹好。置-70超低温冰箱中曝光10天左右。 使用磷屏仪,操作更方便。,12,2021/11/17,RFLP探针,来源:cDNA探针与基因组DNA(gDNA

4、)探针 cDNA探针:保守性较强,探针检测的多态性频率较低。 gDNA探针:检测的多态性频率较高,但不同种属特异性较强。 玉米RFLP探针:http:/probes. Html,13,2021/11/17,探针标记随机引物法,25 ng变性DNA 5ul 寡聚核苷酸 2ul BSA 3ul -32PdCTP 2ul Klenow酶 加水至50ul,37温箱中标记2小时,14,2021/11/17,RFLP标记特点,共显性,可以区别纯合和杂合基因型 稳定、重复性强 某些植物中开发探针已遍及整个基因组 缺点:DNA需要量较大,技术复杂; 用于做图较费时,难以分析大量样品; 在基因组较大、严格自花授粉作物上多态性很低,使遗传图饱和度低。,15,2021/11/17,RAPD,原理: 用一个随机引物(8-10bp)、碱基随机排列的寡核苷酸序列,非定点地扩增基因组DNA,然后电泳分开扩增片段。,16,2021/11/17,Polymerase Chain Reaction-PCR,3,5,TCATGA,CGAGCG,DNA is doubled with each cycle,17,2021/1

5、1/17,RAPD的操作,PCR反应: DNA(20ng/l)1l Primer15ng Mg2+ Taq酶(5 加水至20l,再加入石腊油,进行PCR扩增,18,2021/11/17,Step1 95 2分钟 Step2 95 15秒 Step3 36 30秒 Step4 72 45秒 Step5 GOTO Step2 46循环 Step6 72 5分钟,PCR扩增:,19,2021/11/17,主要特点,无需杂交,设计引物也无须知道序列信息; DNA需要量少,引物便宜,成本较低; 技术简便,操作方便、快速,不涉及分子杂交和放射性自显影等技术。 不同物种间引物通用; 缺点:大多显性遗传,不能鉴别杂合和纯合子;实验重复性较差,结果可靠性较低。,20,2021/11/17,DAF(DNA amplification fingerprinting):,与RAPD不同的是: 引物浓度更高,引物长度更短(一般58个碱基),且往往用聚丙烯酰胺凝胶电泳,通常会产生非常复杂的带型,谱带信息比RAPDs大得多。 (Caetano-Anolles等,1990),21,2021/11/17,AP-PCR(

6、arbitrarily primed polymerase chain reaction),引物较长(1050bp); 引物浓度较高; 引物长度不定,并且常常来自为其它目的而设计的引物(如M13通用测序引物)。,22,2021/11/17,ISSR,23,2021/11/17,共同优点: 在不需要知道所扩增DNA序列情况下,产生DNA片段的指纹; 需DNA量少,产生多态性丰富。 缺点: 对反应条件非常敏感,重复性差。,24,2021/11/17,SCARs(Sequenced Characterized Amplified Regions),为提高RAPD标记稳定性,把目标RAPD片段克隆测序,根据片段两末端的序列设计特定引物(通常24个碱基),再进行PCR扩增,可把相应的单一位点鉴定出来。 具有更高的可重复性 共显性,25,2021/11/17,微卫星标记(SSR),真核生物基因组普遍存在,呈随机分布,大约每隔10-50kb就存在一个SSR. 哺乳动物中约为植物的5-6倍;植物中平均有一个SSR;双子叶植物SSR数量大于单子叶植物,核DNA SSR数量多于细胞质DNA; 根据核心序列

7、碱基数的不同,可分为单碱基、2碱基、3碱基、4碱基等多种重复型。,26,2021/11/17,不同物种其重复序列及重复单位频率不同。 通过对54个植物种核DNA和28个植物种细胞器DNA SSR(1-4bp)的搜索,发现: (AT)最丰富,然后依次是: (A)n、(T)n、(AG)n、(CT)n、(AAT)n、(ATT)n、(AAC)n、(GTT)n、(AGC)n、(GCT)n、(AAG)n、(CTT) n、(AATT)n、(TTAA)n、(AAAT)n、(ATTT)n及(AC)n、(GT)n。 同一类内碱基种类不同的SSR,丰度差别很大。,SSR的分布特点,27,2021/11/17,SSR的功能,长期以来一直认为SSR是转录哑区,没有明确的生理功能。但随着研究深入,证明并非如此。 SSR的主要功能: 编码氨基酸; 染色体末端的SSR,有保护DNA完整性、避免降解、融合及丢失的功能; 提高或降低临近基因转录速率; 基因重组的热点,是基因变异的来源; 部分SSR可产生转录启动复合物或活化染色体,28,2021/11/17,两端序列多是保守的单拷贝序列,可以根据两端序列设计一对特异引物,

8、通过PCR将其间微卫星序列扩增出来,利用电泳技术获得长度多态性。 不同材料重复次数的不同,导致了SSR长度的高度变异性。,SSR分析,29,2021/11/17,SSR分子标记的创制,基因组文库的构建 探针制备-预杂交-带有SSR克隆的选择 测序 引物设计 检测 其它方法: EST-SSR、相关种间SSR. .,30,2021/11/17,Cross-species SSR,Taxonomic TransferabilityPolymorphism Divergence % (N) % (N) Same subgenus 89.8 (521)78.3 (299) Same genus 76.4 (1800) 86.0 (773) Same alliance 45.4 (403)50.4 (141) Same family 35.2 (1683) 58.4 (363),31,2021/11/17,SSR的操作,PCR反应: DNA(20ng/l)4l Mg2+ Taq酶(5 加水至20l,32,2021/11/17,混合后,进行PCR扩增: Step1 95 2分钟 Step2 95 3

9、0秒 Step3 56 30秒 Step4 72 60秒 Step5 GOTO Step2 31循环 注:SSR引物退火温度在52-65 不等。,33,2021/11/17,SSR的特点:,两侧顺序保守,在同种间多相同; 数量丰富,在整个基因组均匀随机分布; 实验重复性好,结果可靠; 多数SSR增减重复序列频率高,在品种间具广泛位点变异; 共显性标记,可鉴别杂合子和纯合子; 仅需微量组织,适合PCR分析半自动化,34,2021/11/17,相对的物种专一性; 由于开发时需针对每个座位的微卫星序列,发现其两端的单拷贝序列设计引物,需建立基因文库、克隆识别与筛选、测序等过程,开发困难,费用较高,耗时长; 实际分析时一般每次只分析单个位点; 不同引物退火温度不同,需要探索。,不足:,35,2021/11/17,SSR的检测,琼脂糖凝胶检测(同前) 聚丙烯酰胺凝胶检测 一般采用银染、荧光检测。,36,2021/11/17,银染检测程序,脱色:加1升10%HAC液,脱色20分钟 冲洗:用重蒸水冲洗胶板2次,每次5分钟 染色:加染色液(1%AgNO3,0.075%甲醛)30分钟 冲洗:用重蒸水冲洗

10、胶板不超过5秒钟; 显影:预冷显影液(30g/LNaCO3,0.075%mg/mlNa2SO3),轻摇到带纹出现; 定影:在固定/停止液并轻摇3-5分钟; 冲洗:用重蒸水冲洗2次,每次2分钟; 干胶:室温下自然干燥过夜。,37,2021/11/17,AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism),原理: 基于RFLP技术和PCR技术的结合,38,2021/11/17,DNA MseI -MseI MseI -EcoRI EcoRI -EcoRI MseI -MseI片段环化,不利小片段扩增; EcoRI -EcoRI 引物的退火温度高; MseI -EcoRI 片段优先扩增,酶切连接,39,2021/11/17,接头序列,Mse 接头、Pst 分别为: Mse: 5-GACGATGAGTCCTGAG-3 3-TACTCAGGACTCAT-5 Pst: 5-CTCGTAGACTGCGTACC-3 3-CTGACGCATGGTTAA-5 EcoR: 5-CTCGTAGACTGCGTACC-3 3-CTGACGCATGGTTAA-5,40,2021/

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