1. 引言
溪流生态系统作为一种脆弱的生态系统,目前受到广泛的关注 [1]。古里河国家湿地公园是我国大兴安岭东部林区最具代表性的天然湿地生态系统。其湿地面积大、并且具有丰富的生物多样性。它由大古里河、小古里河、大金河与母子公河等众多溪流组成。公园内受到的干扰较少,河溪众多,物种丰富。其中,细鳞鱼(Brachymystax)、哲罗鲑(Hucho taimen)和黑龙江鮰鱼(Thymallus arcticus grubei)等是重点保护鱼类。溪流中的这些鱼类主要以河溪中的水生昆虫为食,尤其是EPT (E:蜉蝣目Ephemeroptera;P:襀翅目Plecoptera;T:毛翅目Trichoptera)水生昆虫幼虫。EPT水生昆虫是大型底栖动物的重要类群,作为溪流中鱼类的重要食物来源、处于食物链中的重要环节。同时EPT水生昆虫也是溪流生态系统中喜急流和清洁水体的物种,并具有对水环境变化非常敏感、易于采集等特点 [2] [3]。当前,我国东北地区在大型底栖动物方面的研究主要集中在挠力河湿地 [4]、阿什河 [5] [6] 和帽儿山溪流 [7] 等水域,大兴安岭溪流是我国东北地区生物多样性比较完整的重要生态区之一。因此,进一步研究古里河国家湿地公园溪流大型底栖动物多样性,对大兴安岭区“生物多样性保护优先区域”具有非常重要的意义。
划分大型底栖动物的摄食功能是基于它们获取食物习性、形状和大小的形态学和行为适应。其设施功能群分布特征已经作为评估环境条件对水生生物影响的重要工具 [8] [9] [10] [11] [12]。它不仅可以反映大型底栖动物的群落结构特征和生境适应性特性,还可以反映人类活动的干扰程度以及河流生态系统受损情况 [12] [13]。在我国专门针对溪流大型底栖动物功能摄食类群研究并不多。除了东北地区在挠力河 [4]、帽儿山溪流 [7]、阿什河 [5] [6] 流域的研究外。在太子河流域的研究 [14] 表明:水体流量的不同会影响大型底栖动物群落分布的环境因子不同。除此之外,在济南河流24个采样点的研究 [15] 中发现:在淮河和黄河不同流域内影响大型底栖动物群落分布的环境因子不同。过往的研究进一步指示了大型底栖动物摄食功能群特性及其与环境因子的相关性研究,对古里河溪流生物多样性保护是非常必要的 [16]。
2. 研究地概况
黑龙江古里河国家湿地公园位于大兴安岭加格达奇林业局的古里林场。地理坐标为东经124˚32'06~124˚47'26,北纬50˚36'19~50˚51'05。属典型的寒温带大陆性季风气候区,全年温差较大,年平均气温−1.3℃~2℃,最低气温−45.4℃,年平均降水量约为500 mm。河水于每年11月初开始结冰,直至翌年4月中下旬开始融化。
3. 材料与方法
3.1. 采样时间和采样点设置
本研究针对大兴安岭古里河国家湿地公园气候条件以及地理状况,于2018年夏季和秋季在公园内进行大型底栖动物样本和数据采集,并依据古里河流域水文条件及周围特点,选取了8个采样点,各样点利用GPS现场定位,样点依次为:1#为好凤桥、2#为古里河中游、3#为古里河支流、4#为小古里河水质监测点5号、5#为小古里河水质监测点4号、6#为小古里河鱼类监测点1号、7#和8#分别采自母子公河(图1)。
3.2. 样本采集和鉴定
利用D形抄网(网口直径为30 cm,500 µm网目)进行大型底栖动物采集。采集到的样本和沉积物在采集后将被倒入40目分样筛中进行清洗。并由实验室相关研究人员用镊子将大型底栖动物样本挑拣出来,放入浓度为85%的酒精溶液中进行固定保存,带回实验室后处理。
在实验室中,首先利用肉眼按目对大型底栖动物进行划分,再使用解剖镜和显微镜进行观察,将大多数样本鉴定到种,少数无法鉴别到种的可鉴定到科或属。鉴定方法根据大型底栖动物外部形态以及相关分类书籍进行鉴定如Morse [17]、Merritt [18] 以及周长发 [19] 等作者发表的论文。
3.3. 大型底栖动物摄食功能群划分
本研究根据食性将大型底栖动物摄食功能群划分为5种类型,捕食者(PR:捕捉其他动物为食)、直接收集者(GC:主要以河底多种有机物颗粒为食)、过滤收集者(FC:主要取食水流中的细有机颗粒,颗粒直径在0.45 mm到1 mm之间)、刮食者(SC:主要取食营固着生活的生物)、撕食者(SH:主要取食各种凋落物及粗有机颗粒,颗粒直径大于1 mm)。
3.4. 水体理化指标测定
在现场利用YSI-6600多功能水质分析仪现场测量电导率(Cond)、浊度(NTU)、氯离子(Cl−)、水温(WT)、叶绿素(Chla)、硝酸盐( NO−3 )、氨氮( NH+4 )、pH等水体理化因子。将每个采样点采集到的水样装入500 ml塑料容器中冷冻保存,回到实验室后,当天使用HACH公司生产的水质多参数分析系统DR系列(DRB200、DR1900)测量总磷(TP, mg/l)和总氮(TN, mg/l)等水体理化因子。
Figure 1. Map of sampling sites in Gulihe National Wetland Park
图1. 古里河国家湿地公园采样点示意图
3.5. 统计分析方法
对于原始数据进行处理,创建各样点间底栖动物摄食功能群与其水体理化因子数据库。然后进行趋势对应分析(Detrended correspondence analysis, DCA)。在进行统计方法分析过程中由于该研究是在野外进行的采样,所以环境对于数据内源以及外源性的因素对于数据的影响还是存在的。所以本研究在方法上进行进一步的选择。从得到的结果来看由于物种数据梯度最大值(Lengths of gradient)在四个轴都小于3,因此选择适用的冗余分析(RDA),并使用Canoco for windows 5.0和Canodraw 5.0进行分析。
4. 结果与分析
4.1. 古里河国家湿地公园大型底栖动物物种组成特征
2018年的调查期间,在古里河国家湿地公园共采集到大型底栖动物999个个体,经鉴定隶属于14目34科65种,包括3大类群:水生昆虫、环节动物和软体动物,其中水生昆虫种类最多,且在夏季和秋季8个采样点均有分布。共51种,占总物种数的78.46%。其中EPT昆虫:蜉蝣目9种,襀翅目5种,毛翅目8种。其次发现8种软体动物和6种环节动物,分别占物种总数的12.30%和9.24% (表1)。其中软体动物,主要有椎实螺科;环节动物主要有颤蚓科等。
Table 1. List and feeding functional group characteristics of macroinvertebrates in Gulihe National Wetland Park
表1. 古里河国家湿地公园大型底栖动物名录和摄食功能群特征
注:SH——撕食者,GC——集食者,SC——刮食者,PR——捕食者,FC——滤食者。
4.2. 大型底栖动物摄食功能群的季节变化
从摄食功能群种类组成来看,在季节上有差异,但差异不显著(P > 0.05)。集食者种类数季节变化为夏季最多(15种),秋季次之(12种),集食者以蜉蝣目为主,两个季节的优势物种有所差异,夏季物种个数短丝蜉属一种(Siphlonurus sp.),秋季物种个数四节蜉属一种(Baetis sp.);刮食者种类数季节变化为秋季最多(7种),夏季次之(6种),且主要以襀翅目为主,两个季节物种数量最多的均为凸旋螺(Gyraulus convexiusculus);捕食者种类数季节变化为秋季最多(15种),夏季次之(12种),主要以双翅目摇蚊科稚虫为主;撕食者种类数季节变化为秋季最多(9种),夏季次之(5种),主要以毛翅目为主。两个季节物种数最多的均为Anabolia sp.;滤食者种类季节变化为秋季最多(3种),夏季次之(2种)。主要以真瓣鳃目为主,两个季节个数最多的均为湖球蚬属一种(Sphaerium sp.) (图2)。
Figure 2. Quantitative characteristics of feeding functional groups of macroinvertebrates species in Gulihe National Wetland Park
图2. 古里河国家湿地公园大型底栖动物摄食功能群物种数量特征
4.3. 水体理化因子的季节变化
研究发现,溪流各采样点底质主要为砂底、砾石底、泥沙底和枯枝落叶凋零物等为主,河岸带植被覆盖率高,静水区以沉水植物为主。溪流的水体理化因子夏季和秋季存在一定差异。研究结果表明,水体pH值在夏季呈中性,秋季呈碱性,这一结果与Narangarvuu等人的报道 [20] 相似。此外,水温、电导率和总氮在夏季和秋季之间差异显著(配对样本t检验,P < 0.05);Cl−、 NH+4 、 NO−3 、NTU、Chla和TP差异不显著(配对样本t检验,P > 0.05) (见表2)。
4.4. 水体理化因子与大型底栖动物摄食功能群的Pearson相关分析
古里河国家湿地公园5种大型底栖动物摄食功能群与水体理化因子的Pearson相关分析结果显示只有捕食者(PR)与氯离子(Cl−)存在显著的正相关(P < 0.05, P = 0.026),而与其它水体理化因子没有明显的相关性(见表3)。
4.5. 水体理化因子与大型底栖动物摄食功能群的RDA分析
在RDA分析中水环境因子选取了氯离子(Cl−)、水温(WT)、pH、氨氮( NH+4 )、硝酸根( NO−3 )、总磷(TP)、总氮(TN)、叶绿素(Chla)、浊度(NTU)和电导率(Cond)共10个指标,分别与古里河国家湿地公园夏、秋两个季节以及8个采样点的大型底栖动物摄食功能群物种数量进行冗余分析(RDA)。
水参数
Water parameters
夏季
Summer
秋季
Autumn
t检验
t test
P值
p-value
氯离子Cl− (mg/l)
70.41 ± 26.89
47.67 ± 12.93
2.1583
0.0677
氨氮 N H 4 + (mg/l)
0.52 ± 0.78
0.05 ± 0.02
1.6836
0.1361
硝酸盐 N O 3 − (mg/l)
0.05 ± 0.07
0.02 ± 0.01
1.5474
0.1657
浊度NTU (mg/l)
3.60 ± 1.12
3.04 ± 1.23
0.7670
0.4682
叶绿素Chla (mg/l)
3.68 ± 2.58
3.77 ± 1.84
−0.0797
0.9387
电导率EC (µS/cm)
50.5 ± 26.05
67.38 ± 22.12
−2.7710
0.0276*
pH
7.23 ± 0.56
8.30 ± 0.36
−4.1979
0.0040**
水温WT (℃)
14.76 ± 2.72
12.38 ± 1.17
2.7656
0.0278*
总氮TN (mg/l)
9.70 ± 5.42
2.39 ± 0.96
4.1460
0.0043**
总磷TP (mg/l)
0.17 ± 0.11
0.11 ± 0.09
1.7083
0.1313
Table 2. Characterization of stream physical chemistry in all sampling sites (mean ± standard deviation)
表2. 所有采样点的溪流物理化学表征(平均值 ± 标准偏差)
注:*表示有显著差异(P < 0.05);**表示有极显著性差异(P < 0.01)。
统计分析
Statistical Analysis
GC
SC
PR
FC
SH
氯离子
Pearson相关性
−0.109
−0.147
0.555*
0.087
0.168
Cl− (mg/l)
显著性(双侧)
0.688
0.588
0.026
0.748
0.533
氨氮
Pearson相关性
−0.215
−0.197
−0.243
−0.122
−0.207
N H 4 + (mg/l)
显著性(双侧)
0.424
0.464
0.365
0.653
0.441
硝酸盐
Pearson相关性
0.208
0.287
−0.147
−0.153
−0.0.35
N O 3 − (mg/l)
显著性(双侧)
0.440
0.281
0.586
0.572
0.897
浊度
Pearson相关性
−0.398
0.040
0.247
−0.379
−0.179
NTU (mg/l)
显著性(双侧)
0.127
0.883
0.356
0.148
0.506
叶绿素
Pearson相关性
0.163
0.157
0.316
0.126
0.304
Chla (mg/l)
显著性(双侧)
0.545
0.560
0.234
642
0.252
电导率
Pearson相关性
0.190
0.282
0.007
−0.394
0.011
EC (µS/cm)
显著性(双侧)
0.480
0.290
0.979
0.131
0.967
pH
Pearson相关性
−0.118
−0.018
0.361
−0.105
0.171
显著性(双侧)
0.663
0.949
0.170
0.700
0.527
水温
Pearson相关性
−0.165
0.041
−0.152
0.201
−0.255
WT (℃)
显著性(双侧)
0.543
0.879
0.575
0.456
0.341
总氮
Pearson相关性
0.010
0.55
−0.126
−0.265
−0.173
TN (mg/l)
显著性(双侧)
0.970
0.840
0.641
0.322
0.523
总磷
Pearson相关性
0.346
−0.169
−0.279
−0.491
0.285
TP (mg/l)
显著性(双侧)
0.189
0.532
0.295
0.053
0.285
Table 3. Pearson correlation analysis of the number of feeding functional group species and water environmental factors
表3. 摄食功能群物种数量与水环境因子的Pearson相关分析
注:*. 在0.05水平(双侧)上显著相关。
如图3所示,夏、秋两季应用RDA分析得到前两个排序轴轴一(Axis 1)和轴二(Axis 2)的特征值为0.3354和0.2100。大型底栖动物摄食功能群与环境因子相关性在Axis 1和Axis 2的值分别为0.9852和0.9522,排序结果是可信的。从图3中还可以看出摄食功能FC与理化因子 NH+4 、WT呈正相关,与其他水体理化因子呈负相关。摄食功能群GC与理化因子TP、 NO−3 、Chla、Cond之间呈正相关。摄食功能群SH主要与 NO−3 、Chla、Cond、TN、Cl−之间存在正相关关系。摄食功能群SC主要与TN之间存在正相关。摄食功能群PR主要与理化因子pH、NTU、Cl−之间存在正相关关系。 NH+4 、WT与摄食功能群GC、SH、SC、PR之间呈负相关(见图3)。
Figure 3. RDA sequence diagram between feeding functional groups and environmental factors of macroinvertebrates
图3. 大型底栖动物摄食功能群与环境因子间的RDA排序图
5. 讨论
在本次调查期间,共采集到大型底栖动物14目34科65种,其中水生昆虫种类最多,尤其是EPT类群。其稚虫大部分时间生活在水里,它们的分布受周围各种环境条件影响较大,因此它既在淡水生态系统的能量流动中起重要作用,又是大型底栖动物中最具确定性的清洁指示物种 [3] [21] [22]。在本研究中,并且蜉蝣目(E)物种数量所占百分比在夏季(约32.7%)高于秋季(20.4%)。大型底栖动物数量在夏季中期时减少,而在夏季后期和秋季会由于羽化而引起数量的下降。而水温也是季节性差异的主要表现形式 [23] [24] [25] [26]。以往的研究也支持这一发现:河流系统中大型底栖动物群落组成季节性差异的重要影响因素,通常被认为是水温导致 [27],并且根据“中度干扰”理论 [28],水温的季节性变化增加了物种的丰富度并保持了物种的最大密度。
以往的研究表明,由于大型底栖动物大多以凋落物为食,而凋落物的分解速率受水体pH影响,所以pH的变化会影响大型底栖动物的取食并因此影响大型底栖动物物种的多样性变化 [29] [30] [31] [32]。在本研究中,通过对水体理化因子与大型底栖动物摄食功能群的Pearson相关分析可以得出,捕食者(PR)与氯离子(Cl−)存在显著的正相关关系(P < 0.05, P = 0.026),而其它水体理化因子没有明显的相关性。
RDA分析结果表明,总磷和电导率、pH值、浊度对大型底栖动物摄食功能群的影响也比较大,通过全年以及夏、秋两个季节的比较,可以看出总磷始终与功能群FC存在负相关。在之前的相关研究表明,总磷、总氮对大型底栖动物分布的影响通常呈负相关 [33]。并且大型底栖动物群落结构退化随着总氮和总磷的浓度增加往往愈加严重 [34]。通常氮和磷是衡量水体富营养化的重要指示指标,其含量影响大型底栖动物分布 [35]。但本次研究并未显示氮含量对于大型底栖动物功能群分布的影响。而pH值,以EPT为主的水生昆虫类群以及软体动物类对酸化水体比较敏感 [36] [37]。根据Stoertz和Bourne等 [38] 的研究中得出蜉蝣目和蜻蜓目等类群随着pH值明显降低而消失,物种多样性显著降低 [5]。本研究中水体均不呈现酸性,因此古里河国家湿地公园大型底栖动物多样性比较丰富。在pH值呈中性和碱性这两种水平下,反硝化过程表现良好并形成硝酸盐,浓度较高的硝酸盐为微生物创造了有利的环境,其通过提供更优质的食物来影响大型底栖动物的生产繁殖 [39] [40]。所以本研究进一步观察到大型底栖动物群落变化与生活史特征有关,食物来源等可能导致大型底栖动物群落的季节性变化。
6. 结论
2018年夏季和秋季,在黑龙江省古里河国家湿地公园共采集到999个大型底栖动物个体,鉴定出14目34科65种,分别属于5个摄食功能群,其中捕食者和集食者为优势功能群。通过分析10种水体理化因子对大型底栖动物分布的影响,结果表明,总磷、电导率、浊度和pH是影响大型底栖动物摄食功能群的主要环境因子,并且只有捕食者与氯离子存在显著的正相关关系。
基金项目
国家重点研发计划,典型脆弱生态修复与保护研究(2016YFC05004-3)。
NOTES
*通讯作者。
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网址: 大型底栖动物摄食功能群研究 https://m.huajiangbk.com/newsview2013525.html
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