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一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法.pdf

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1、(10)申请公布号 CN 102559923 A (43)申请公布日 2012.07.11 CN 102559923 A *CN102559923A* (21)申请号 201210073698.0 (22)申请日 2012.03.20 C12Q 1/68(2006.01) C12Q 1/04(2006.01) C12R 1/77(2006.01) C12R 1/645(2006.01) (71)申请人 南京农业大学 地址 210095 江苏省南京市玄武区卫岗 1 号 (72)发明人 陈发棣 宋爱萍 蒋甲福 陈素梅 李会云 陈思思 房伟民 管志勇 (74)专利代理机构 南京天华专利代理有限责任 。

2、公司 32218 代理人 徐冬涛 (54) 发明名称 一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方 法 (57) 摘要 本发明属于植物病原菌的分子生物学检测领 域, 公开了一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种 类的方法。 该方法包括 : (1)植物病样制备 ; (2)聚 合酶链式反应 (PCR)、 电泳检测及片段纯化 ; (3) 测序及结果比对确定病原菌种类。本方法突破了 传统的植物真菌病害鉴定周期长、 专业性强等局 限性, 提供的检测方法可在 6 小时内即可完成检 测与鉴定菊花真菌病害, 检测广谱性强, 灵敏度 高, 工序简单。 (51)Int.Cl. 权利要求书 1 页 说明书 4 页 序列表 2 。

3、页 附图 2 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书 1 页 说明书 4 页 序列表 2 页 附图 2 页 1/1 页 2 1. 一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 其特征在于, 包括如下步骤 : (1) 植物病样制备 : 用蒸馏水冲洗干净待检病样品, 从其中取一块 5mm5mm 左右大小 的病害组织, 置于2ml离心管中, 加入无菌水200l, 剧烈震荡10s, 其溶液作为步骤(2)PCR 反应中的模板 ; (2)PCR、 电泳检测、 片段纯化及测序 : 取步骤(1)离心管中的溶液作为模板, 进行PCR反 应, 引物分别为 : ITS-F : SE。

4、Q ID NO.1, ITS-R : SEQ ID NO.2 ; PCR 反应后将产物进行琼脂糖 凝胶电泳, 确认扩增条带后, 采用Biospin Gel Extraction kit试剂盒进行切胶纯化回收, 将回收产物上 ABI PRISM 3730XL DNA Analyzer 测序仪测序, 测序引物分别为 : SEQ-F : SEQ ID NO.3, SEQ-R : SEQ ID NO.4 ; (3) 测序结果比对确定病原菌种类 : 将测序结果在美国国立生物技术信息中心上进行 BLAST 比对, 从而确定导致菊花真菌病害的病原菌种类。 2. 根据权利要求 1 所述的一种快速鉴定菊花真菌病。

5、害病原菌种类的方法, 其特征在 于 : 步骤 (1) 所述的待检病样品为待检菊花的叶片、 茎或根部。 3. 根据权利要求 1 所述的一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 其特征在 于 : 步骤 (2) 所述 PCR 反应体系共 50l, 包括 : 25l 2MightAmp Buffer Ver.2, 1l MightAmpDNA Polymerase, 1l 上游引物 ITS-F, 1l 下游引物 ITS-R, 1l 步骤 (1) 离心 管中的溶液作为模板, 加灭菌水补足至 50l。 4. 根据权利要求 1 所述的一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 其特征在 于 : 步骤 (2。

6、) 所述 PCR 反应程序设定为 98预变性 2min, 98变性 10s, 55退火 30s, 72 延伸 1min, 循环 30 35 次, 72延伸 7min。 5. 根据权利要求 1 所述的一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 其特征在 于 : 步骤(3)将测序结果在美国国立生物技术信息中心上进行BLAST比对, 与所测序列最接 近的且相似率达 98以上的即为导致该菊花真菌病害的病原菌种类。 权 利 要 求 书 CN 102559923 A 2 1/4 页 3 一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法 技术领域 0001 本发明属于植物病原菌的分子生物学检测领域, 涉及一种快速鉴。

7、定菊花真菌病害 病原菌种类的方法 背景技术 0002 菊花 (Dendranthema morifolium Tzvel.(Chrysanthemum morifolium Ramat.) 为菊科菊属多年生宿根草本植物, 是我国十大传统名花, 世界上最早栽培的观赏植物之一, 具有很高的经济和观赏价值, 在花卉产业中占据重要的地位。菊花在移栽、 扦插、 以及种植 过程中易感染真菌病害, 其中以菊花黑斑病和枯萎病最为普遍, 本专利将以这两种菊花真 菌病害为例。菊花黑斑病症状为 : 发病初, 叶片出现大小不等的浅黄和褐色斑, 逐渐发展 成边缘黑褐色、 中间灰黑色的近圆形不规则斑块, 后期病斑上长出黑。

8、色小点, 严重时病斑相 连, 叶片发黑焦枯乃至脱落, 病株从下部叶片开始顺次向上枯死至全株。菊花枯萎病症状 为 : 发病初时叶色变浅发黄, 萎蔫下垂, 茎部、 枝条、 根部逐渐变成淡褐色直至变黑腐烂坏 死, 湿度大时病部产生白霉。 0003 以往检测植物真菌病害病原菌主要有形态学观察法、 酶联免疫法、 基因芯片法、 质 谱技术等。常规直接或培养后镜检的形态学鉴定来发现和确认病原菌, 其操作繁琐、 费时、 并且需要高度的专业知识。尤其对于那些生长条件特殊、 形态相似的菌株要通过传统的表 型特征鉴定方法来加以鉴别显得非常困难, 许多时候只能鉴定到属这一级别。酶联免疫法 在国外已经形成商品化生产, 。

9、但是每种病原菌都需要特异的酶标记抗体, 标记过程比较复 杂, 价格比较昂贵, 且存在假阴性和假阳性问题。 基因芯片技术虽然能够同时进行多种真菌 的鉴定, 但只局限于已知的常见病原真菌, 对非常见菌、 突变菌或者新菌种则无能为力, 且 成本过高。质谱技术在微生物鉴定中具有快速准确的优点, 但由于质谱鉴定必须是纯化培 养的单克隆菌落, 操作复杂且所需的专业技术要求较高, 设备购置和维护费高昂。 0004 随着分子生物学手段的发展与应用, 利用真菌核糖体 DNA 上的内部转录间隔区 (ITS) 进行真菌种类鉴定已经得到广泛认可。但现有方法利用 ITS 序列对病原真菌进行鉴 定前, 须先经过纯菌株的分。

10、离纯化, 真菌 DNA 的提取, PCR 扩增以及亚克隆等一系列繁琐的 过程。 这种方法存在如下缺点 : (1)至少需要7天时间, 费时费力 ; (2)对目前无法培养或难 培养的真菌很难进一步鉴定和分析 ; (3) 分离和培养单胞存在较高的技术难度 ; (4) 繁琐的 真菌 DNA 提取步骤 ; (5)PCR 扩增片段需要经过连接、 转化、 质粒提取等步骤后才能测序。这 些缺点极大地限制了田间病原菌的快速鉴定, 贻误了病情。 目前, 大量的真菌病害导致了菊 花观赏品质下降, 造成了巨大的经济损失。 发明内容 0005 发明目的 : 本发明的目的是提供一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 。

11、能够快速鉴定菊花真菌病害的病原菌种类。 0006 技术方案 : 为实现上述目的, 本发明的快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 说 明 书 CN 102559923 A 3 2/4 页 4 包括如下步骤 : 0007 (1)植物病样制备 : 用蒸馏水冲洗干净待检病样品(叶片、 茎或根部), 从其中取一 块 5mm5mm 左右大小的病害组织, 置于 2ml 离心管中, 加入无菌水 200l, 剧烈震荡 10s, 其溶液作为步骤 (2)PCR 反应中的模板 ; 0008 (2)PCR、 电泳检测、 片段纯化及测序 : 取步骤 (1) 离心管中的溶液作为模板, 进行 PCR 反应, 引物分别为 :。

12、 ITS-F : 5 -CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (SEQ ID NO.1), ITS-R : 5 -TCCGCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 (SEQ ID NO.2) ; PCR 反应后将产物进行琼脂糖凝胶电 泳, 确认扩增条带后, 采用Biospin Gel Extraction kit(BioFlux)试剂盒进行切胶纯化回 收, 将回收产物上 ABI PRISM 3730XL DNA Analyzer 测序仪测序, 测序引物分别为 : SEQ-F : 5 -GTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (SEQ ID NO.3), SEQ-。

13、R : 5 -GCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 ( SEQ ID NO.4) ; 0009 (3) 测序结果比对确定病原菌种类 : 将测序结果在美国国立生物技术信息中心 (NCBI) 上进行 BLAST 比对, 从而确定导致菊花真菌病害的病原菌种类。 0010 步骤 (2) 所述 PCR 反应体系 50l 中包括 25l 2MightAmp Buffer Ver.2, 1lMightAmp DNA Polymerase(TaKaRa), 1l上游引物ITS-F, 1l下游引物ITS-R, 1l 步骤 (1) 离心管中的溶液作为模板, 加灭菌水补足至 50l。 0011 步骤(2。

14、)所述PCR反应设定为98预变性2min, 98变性10s, 55退火30s, 72 延伸 1min, 循环 30 35 次, 72延伸 7min。 0012 步骤 (3) 所述的测序结果比对确定病原菌种类为 : 将测序结果在 NCBI 上进行 BLAST 比对, 与所测序列最接近的且相似率达 98以上的即为导致该菊花真菌病害的病原 菌种类。 0013 有益效果 : 本发明通过比对真菌和菊花ITS序列, 设计了只能扩增出真菌ITS序列 的引物, 采用极高 PCR 反应性能的 MightyAmp DNA Polymerase 扩增菊花病原真菌的 ITS 序 列, 产物纯化后直接测序, 通过 BL。

15、AST 在线比对, 能在较短时间内对其进行分类和鉴定。相 对于之前的 PCR 鉴定植物病原真菌的方法 ( 至少需要 7 天时间 ), 省去了纯菌株的分离纯 化、 真菌 DNA 的提取以及亚克隆等繁琐过程, 减少了技术难度, 省力省时, 还能鉴定出不可 培养或难培养的真菌, 大大提高了鉴定的效率和范围。 0014 本发明提供了一种快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法, 能在 6 小时内鉴定 出病原菌种类, 为有针对性地开展菊花真菌病害的防治, 及时解决菊花的真菌病害问题提 供了强有力的技术支持, 推动菊花产业的发展。 附图说明 0015 图 1 为实施例 1 中病叶样本图 0016 图 2 为实。

16、施例 2 中病根样本图 0017 图 3 为实施例 1 中 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳图 0018 图 4 为实施例 2 中 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳图 0019 图 5 本发明快速鉴定菊花真菌病害病原菌种类的方法流程图。 具体实施方式 说 明 书 CN 102559923 A 4 3/4 页 5 0020 下面结合附图对本发明作更进一步的说明。 0021 实施例 1 0022 取田间表现叶片发黄、 发黑的菊花植株为材料 ( 如图 1 所示 ), 将病叶用蒸馏水 冲洗干净, 从其中取一块 5mm5mm 左右大小的病害组织, 置于 2ml 离心管中, 加入无菌水 200l, 剧烈震荡 10。

17、s, 其溶液作为下一步 PCR 反应中的模板 ; 0023 PCR 反应所用上下游引物分别为 : 0024 ITS-F : 5 -CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (SEQ ID NO.1), 0025 ITS-R : 5 -TCCGCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 (SEQ ID NO.2)。 0026 PCR 反应体系 50l 中包括 25l 2MightAmp Buffer Ver.2, 1l MightAmp DNAPolymerase(TaKaRa), 1l 上游引物 ITS-F, 1l 下游引物 ITS-R, 1l 步骤 (1) 离心 管中的溶液。

18、作为模板, 加灭菌水补足至 50l。PCR 反应设定为 98预变性 2min, 98变性 10s, 55退火 30s, 72延伸 1min, 循环 30 35 次, 72延伸 7min。 0027 PCR 反应后将产物进行琼脂糖凝胶电泳, 确认扩增条带后 ( 如图 3 所示 ), 采用 Biospin GelExtraction kit(BioFlux) 试剂盒进行切胶纯化回收。将回收产物上 ABI PRISM 3730XL DNAAnalyzer 测序仪测序, 测序引物分别为 : SEQ-F, SEQ-R ; 0028 SEQ-F : 5 -GTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (。

19、SEQ ID NO.3), 0029 SEQ-R : 5 -GCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 (SEQ ID NO.4)。 0030 将测序结果在 NCBI 上进行 BLAST 比对, 与所测序列最接近的且相似率达 98以 上的为链格孢 Alternaria alternata, 说明导致该田间菊花黑斑病的病原菌为链格孢 A/ ternariaalternata。 0031 实施例 2 0032 取田间表现叶色变浅发黄, 萎蔫下垂, 茎部、 枝条、 根部逐渐变成淡褐色的菊花植 株为材料(如图2所示), 将根茎部用蒸馏水冲洗干净, 从其中取一块5mm5mm左右大小的 病害组织, 。

20、置于 2ml 离心管中, 加入无菌水 200l, 剧烈震荡 10s, 其溶液作为下一步 PCR 反 应中的模板 ; 0033 PCR 反应所用上下游引物分别为 : 0034 ITS-F : 5 -CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (SEQ ID NO.1), 0035 ITS-R : 5 -TCCGCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 (SEQ ID NO.2)。 0036 PCR 反应体系 50l 中包括 25l 2MightAmp Buffer Ver.2, 1l MightAmp DNAPolymerase(TaKaRa), 1l 上游引物 ITS-F, 。

21、1l 下游引物 ITS-R, 1l 步骤 (1) 离心 管中的溶液作为模板, 加灭菌水补足至 50l。PCR 反应设定为 98预变性 2min, 98变性 10s, 55退火 30s, 72延伸 1min, 循环 30 35 次, 72延伸 7min。 0037 PCR 反应后将产物进行琼脂糖凝胶电泳, 确认扩增条带后 ( 如图 4 所示 ), 采用 Biospin GelExtraction kit(BioFlux) 试剂盒进行切胶纯化回收。将回收产物上 ABI PRISM 3730XL DNAAnalyzer 测序仪测序, 测序引物分别为 : SEQ-F, SEQ-R ; 0038 SEQ。

22、-F : 5 -GTCATTTAGAGGAAGTAAAAG-3 (SEQ ID NO.3), 0039 SEQ-R : 5 -GCTTATTGATATGCTTAAGTTC-3 (SEQ ID NO.4)。 0040 将测序结果在NCBI上进行BLAST比对, 与所测序列最接近的且相似率达98以上 的为尖孢镰刀菌 Fusarium oxysporum, 说明导致该田间菊花枯萎病的病原菌为尖孢镰刀菌 说 明 书 CN 102559923 A 5 4/4 页 6 Fusariumoxysporum。 说 明 书 CN 102559923 A 6 1/2 页 7 0001 序 列 表 CN 102559923 A 7 2/2 页 8 0002 序 列 表 CN 102559923 A 8 1/2 页 9 图 1 图 2 图 3 图 4 说 明 书 附 图 CN 102559923 A 9 2/2 页 10 图 5 说 明 书 附 图 CN 102559923 A 10 。

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