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植物切片制作.docx

植物组织制片技术是随着显微镜的出现而发展起来的技术,是人们认识植物体结构的有 效手段, 已成为植物生物学的重要组成部分。植物制片技术已建立了许多方法,现简要介绍 如下几种最常见的制片技术:徒手切片法、滑走切片法、离析法、压片法、石蜡制片法和冰 冻切片法。 徒手切片法 徒手切片法是指手拿刀片把植物新鲜材料切成薄片,所作的切片通常不经染色或经简单 染色后,制成临时的水装片用于观察,亦可以通过脱水与染色制成永久制片。优点:简单、 方便,不需要复杂的设备,不经过化学药物的处理,基本上保留了植物活体的状态。 用品与材料 显微镜、载(盖)玻片、刀片、毛笔、培养皿、吸水滤纸、滴管、 ddH2O 或清水、 1% 番红水溶液、菜叶、胡萝卜、马铃薯 实验材料 对于软硬适中, 便于手持的材料, 可将实验材料截成适当小块, 一般以长 2~3cm , 切片断面不超过 3~5mm 2 为宜。对于过于柔嫩的器官(如叶片等) ,一般可选用胡萝卜根、 土豆块茎等作为支撑物,包被住材料后再进行切片。有时也可将叶片卷成圆筒后再进行切片。 实验步骤 1、在小培养皿中放入ddH2 O 或清水。 2、用左手拇指、食指和中指拿住材料,拇指略低于食指与中指,并使材料略为突出在指尖 上面。 3、右手持刀,将刀片平稳地放在左手食指之上,与材料切面平行,然后以均匀的动作,自 左前方向右后方,斜着向后拉切,切时用臂力而不用腕力。 4、切下许多薄片后,用湿毛笔将这些薄片放人培养皿中。用毛笔挑选透明的薄片,放在载 玻片上,用吸管滴一滴水在载玻片上,盖上盖玻片,制成临时装片进行观察。 注意事项 1、在切片前,要不断地用水湿润材料和刀片。 2、切片时,两只手应该保持活动状态,不要使它们紧靠身体或实验台,且用力不要过猛, 不能用刀片挤压材料或来回切割材料。 3、动作要敏捷,材料要一次切下,不要追求切片形状的完整。 简单的组织化学染色 经徒手切片法切下的薄片,可以进行简单的组织化学染色,这样更容易分辨细胞的结构, 同时可以观察到细胞各部分的化学成分。一般选用以下几种染料进行染色: 1、 1%番红水溶液木质化、栓质化的细胞壁及细胞核染成红色。 2、 25%硫堇水溶液组织呈现从粉红到蓝紫的多色反应,区分含纤维素、木质素的细胞壁。 3、 5%间苯三酚反应木质化的细胞壁成红色,颜色深浅与木质化程度有关。 4、 I2 —KI 染色淀粉粒呈蓝色,细胞核呈黄色。 视课上实验进展情况,另外安排显微镜下观察动植物组织装片。 压片法( 简要介绍,补充实验洋葱根尖有丝分裂染色体标本制备及观察) 压片法是植物的器官或组织未经处理或经过处理后,被涂抹或压在载玻片上,使细胞成 一薄层,便于进行观察的一种制片方法。压片法的实验步骤包括:取材、预处理、固定、 解离、染色、压片、镜检和制成永久制片等。 实验步骤 1、取材:用锋利的双面刀片截取生长良好的植物根尖或茎尖,长度不超过3mm。 2、预处理:利用预处理液如秋水仙素、对二氯苯等处理材料,使细胞分裂停留在有丝分裂 的中期, 并使染色体缩短变粗。预处理的时间视不同植物而定。观察有丝分裂各期特点和减 数分裂的幼小花药的制片不需要预处理。 3、固定:用固定剂迅速杀死正在分裂的细胞,使其尽量保持分裂的状态。常用的固定剂是 卡诺固定剂,固定时间l~24h 。 4、解离:用酶或盐酸处理固定后的材料,使正在分裂的细胞分离,便于压片。解离时要掌 握好时间,特别是用盐酸解离时,时间过短,细胞不易分开;时间过长,则染色困难。 5、染色:常用碱性品红或醋酸洋红等染核的染料进行染色。 6、压片:压片时,将新鲜的或经固定的材料放在载玻片上,用解剖刀或镊子后端压住材料, 并往载玻片的另一边拖,注意用力均匀。也可以将载玻片上的材料盖上盖玻片,用解剖针、 竹毛衣针或铅笔轻轻敲击,使组织或细胞分散,再用拇指挤压盖玻片,使细胞成一薄层。前 者常用于花粉和小孢子母细胞,后者用于根尖、茎尖和幼叶等幼嫩器官。 7、镜检:将压片置于显微镜下观察,选取目标细胞。用记号笔在载玻片和盖玻片上分别作 记号。 8、照相或制成永久制片:好的压片可以直接照相,也可以通过冷冻干燥后制成永久制片。 滑走切片法(补充) 滑走切片法是利用滑走切片机切新鲜的或保存的材料,亦可以切经由石蜡制片法包埋的 材料。此法切出的切片厚薄均匀、结构完整,适用于一些比较坚硬的材料。 用品和材料 实验用品显微镜、滑走切片机、切片刀、载玻片、盖玻片、双面刀片、毛笔、培养皿、 滤纸、滴管和软木。 实验材料  新鲜材料,若直径小于  lcm ,可分割成  3cm  长的小段;若大于  lcm ,则应将材 料劈开,使切面的面积小于  lcm2  为宜。新鲜材料可直接用于切片,也可以经处理后再进行 切

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