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胡萝卜组织培养胡萝卜组织培养.doc

花匠小妙招
2025-07-31 10:51

胡萝卜组织培养胡萝卜组织培养

. 研究背景 1.1 胡萝卜胡萝卜(Daucus carota L．)为伞形科植物，是世界上最重要的蔬菜作物之一，占蔬菜生产总量的3％，达13．5百万吨(Hole，1996)。胡萝卜块根营养丰富，约含有88％的水、6％～8％糖、1％～2％植物纤维，0．7％～1．2％蛋白质、1％灰份及0～3％脂肪[1] 。由于其富含维生素A前体类胡萝b素和植物纤维，因而是一种重要的营养保健品。其适于生食、加工、烹调等多种用途。中国是农业大国，胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。因此继续深入研究胡萝卜细胞培养还是很有必要的。 1.2 组织培养植物组织培养是在含有营养物质及植物生长物质的培养基中，培养离体植物组织（器官或细胞）并诱导使其长成完整植株的技术[2]。其理论基础是植物细胞具有全能性，即一个完整的植物细胞拥有形成一个完整植株所必需的全部遗传信息，具有发育成完整植株的潜能，在适宜的条件下能够发育成一个完整的植株。进行离体培养时，植物的组织或器官通过脱分化形成愈伤组织。胡萝卜价格比较便宜，材料易得，而且在组织培养方面容易诱导发生，我们可以通过这个实验熟悉植物组培。2. 材料与方法 2.1 材料培养皿、锥形瓶、无菌纸、镊子、解剖刀、烧杯、量筒、玻璃棒、酒精灯、无菌操作台、高压灭菌锅、微波炉、PH试纸。 MS培养基、2,4-D、6-BA、活性炭、无菌水、蔗糖、琼脂粉、75%酒精、1% (体积比)浓度的次氯酸钙溶液、胡萝卜块根（2012-2-21-怡购，2012-2-24-水果摊，2012-3-13-水果摊，2012-3-21-珠影，2012-3-29-荣一） 2.2 方法 2.2.1 MS培养基的配制200ml 用大烧杯取无菌水100-120ml 依次用移液管量取加入母液：20ml大量（10x）、2ml微量（100x）、2ml铁盐（100x）、4ml有机（50x）、2mg/L2,4-D。称取6g蔗糖加入，搅拌直至全部溶解。用量筒定容至20ml。用pH试纸调pH至6.0-6.2 称取1.6g琼脂加入，搅拌。放入微波炉内加热直至清澈无沉淀。分装后高压灭菌3h。探究实验1激素为1.0mg/L2,4-D，1.0mg/L6-BA[3] 探究实验2激素为2.2mg/L2,4-D[3 4] 2.2.2 培养条件接种环境 1先用75%酒精擦拭无菌操作台的内部6个面。 2将现配的75%的酒精、1%次氯酸钠、刀、镊子、无菌纸、无菌水、小烧杯、培养皿、废液缸、试管架、打火机等操作用的工具放置到相应位置。 3将酒精灯添加适当的酒精（不超过容积的2/3），并检查是否可以点燃。 4先开紫外灯40min，后再通风20min。 5进入操作台的物品都要经酒精消毒。操作过程及有关条件 1在无菌操作台上操作。 2点燃酒精灯，倒平板。 3消毒外植体。把清洗好的胡萝卜块根放入无菌操作台，消毒先用75%酒精对胡萝卜直根消毒10s 再用1%的次氯酸钙溶液消毒7~8min，用无菌水冲洗3次，放入成有无菌水的烧杯中待用。 4拆刀镊，并消毒。 5切外植体。用消毒好的小刀沿截面将其横切成厚度3~5mm左右的小圆片，然后如图所示切，将韧皮部和木质部切去，留下形成层。 6 接种外植体，4~5个/培养皿。 7 封口。培养环境 25℃暗处理 3．结果与分析 3.1 实验数据统计实验周期：实验当日第一次观察时间 6天后结果统计 12~14天后表1 五次实验记录统计表日期激素类型及浓度(mg/L) 培养盘数正常盘数 A 2-21 2,4-D 2.0 3 0 B 2-24 2,4-D 2.0 8 2 C 3-13 2,4-D 2.0 4 2 D 3-21 2,4-D 1.0，6-BA 1.0 4 2 2,4-D 2.0 4 1 E 3-29 2,4-D 2.2 13 6 3.2 实验结果说明及表格 A中3盘 2盘染菌 1盘干枯 B中8盘 1盘染菌 5盘玻璃化2盘正常40%愈伤 C中4盘 2盘染菌 2盘褐化----移盘后 1盘染菌 1盘60%遇上 D中4盘 2盘褐化 2盘愈伤70% 4盘 1盘染菌 1盘玻璃化 1盘培养皿损坏 1盘愈伤50% E中1