1.本发明涉及植物组织培养领域,具体是一种以多花黄精茎节培育组培苗的方法。
背景技术:
2.多花黄精(polygonatumcyrtonema hua)为百合科黄精属多年生草本植物,是我国大宗的药食两用中药材,性平、味甘,入脾、肾、肺经,具有补肾益精、宽中益气、滋阴润燥、生津补脾之功效,长期用于治疗肾虚亏损,脾胃虚弱,肺虚燥咳,体倦乏力等症,也可用于治疗心血管疾病、结核病、慢性肝炎、心悸气短、久病津亏口干、糖尿病、高血压等病症,是150种中成药的重要组分,应用非常广泛。
3.多花黄精分布于长江以南大部分地区,虽然分布范围广,但由于药用资源仍以野生资源为主。随着人们生活水平提高,更加注重健康养生,多花黄精对许多现代慢性病有很好的治疗效果,且无毒副作用,可长期服用,导致市场需求量急剧增加,野生资源被乱采滥挖现象严重,野生蕴藏量急剧下降,人工栽培势在必行。
4.近年来,多花黄精开始了人工栽培,种苗主要是以种子苗和块茎苗为主。多花黄精种子虽多,但种子育苗的时间非常长,需要生长3年小苗才抽出带叶的茎成大苗,移栽到大田种植成活率才有保障。块茎苗的种源混杂,且存在病毒积累导致种性退化、易感病等问题,块茎运输易造成机械伤而腐烂,收获的产量和质量参差不齐。
5.植物组培技术具有提纯复壮、短时间内能生产大量种苗等优点,在作物种苗繁育中广泛应用。许多学者研究了黄精、多花黄精及滇黄精等黄精属植物的组培快繁技术研究,主要是以块茎上新芽或种子为外植体,由于植物组培技术具有保持原作物所有性状的特点,而种子或块茎芽处于多花黄精生长的幼苗期,导致即使是带有块茎的组培苗出瓶后,还需要1年时间的假植才能成为抽出茎的大苗,虽然比种子苗时间短2年,但比其它作物组培苗育苗时间长,因此,多花黄精的组培苗应用受到了很大限制。而且多花黄精的块茎新芽被切除后基本上不能再长芽,这个块茎不能作为种茎,只能作为药材使用,加上块茎芽生长在土壤里,微生物种类繁多,灭菌很难过关,易出内生菌,污染率高,增加组培苗的成本。
技术实现要素:
6.本发明针对多花黄精育苗时间长的问题,提出一种以多花黄精茎节培育组培苗的方法。该方法以多花黄精茎节为外植体,在初代诱导培养和继代增殖培养阶段,带茎叶的芽还可以剪成带节间的茎段进行丛生芽诱导,进一步提高增殖系数,通过壮苗培养使芽保持带茎叶的成苗状态,再进行生根结块茎培养,最终获得带茎叶的多花黄精组培苗,假植1
‑
3个月就可以移栽到大田种植,大大缩短了育苗时间,节省假植移栽的时间和场地,降低了育苗成本。
7.实现本发明目的的技术方案是:一种以多花黄精茎节培育组培苗的方法,包括以下步骤:(1)外植体取材及预处理:取多花黄精幼嫩的茎芽,剪掉叶片,用洗衣粉水浸泡,不
时搅拌,再用流动清水冲洗干净,滤干水滴,备用;(2)灭菌及初代诱导培养:在超净工作台上,将多花黄精茎剪成带节间1 cm长的茎段,用0.1%升汞(hgcl2)溶液灭菌处理,无菌水清洗干净,放到灭菌过的滤纸上吸干水分,剪去两头的旧伤口,接入初代诱导培养基上培养30 天,芽诱导率为62.1%~95.80%;所述初代诱导培养基为:ms+6
‑
ba0.5~2.0mg/l+zt0.1~0.7mg/l + tdz0.1~0.5 mg/l+iaa0.01~0.1 mg/l+谷氨酰胺0.2 mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(3)继代增殖培养:在超净工作台上,将步骤(2)中诱导出的无菌芽剪成带节间的茎段,接入增殖培养基中培养30 天,茎段诱导出丛生芽中部分为单叶芽、部分为有茎叶的芽,增殖系数为3.2~5.9;所述增殖培养基为:ms+zt0.1~0.5 mg/l+6
‑
ba0.5~2.0 mg/l+naa0.01~0.1 mg/l+2,4
‑
d0.1~0.5 mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(4)壮芽培养:在超净工作台上,取出步骤(3)中丛生芽,切分成有2个芽的小丛生芽,接入壮芽培养基中培养30 天,单叶芽长成带茎叶的芽,芽比较壮,芽高为2~5 cm;所述壮芽培养基为:ms+6
‑
ba0.5~2.0 mg/l+kt0.1~1.0mg/l + naa0.05~0.5 mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(5)生根结块茎培养:将步骤(4)中得到带茎叶的丛生芽切分成单芽,接入生根结块茎培养基中培养60 天,获得有块茎的组培苗,块茎大小为0.4~1.2 cm,平均根数为5.4~24.1条;所述生根结块茎培养基为:1/2ms+naa0.5~2.0mg/l+iaa0.5~2.0 mg/l+da
‑
6 0.1~0.5 mg/l+白糖35 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;步骤(2)至(5)的培养条件是:培养温度为25
±
1℃, 光照时间为12小时/天,光照强度为2000 lx。
8.所述初代诱导培养基优选为:ms+6
‑
ba1.0mg/l+zt0.4mg/l + tdz0.3 mg/l +iaa0.05 mg/l+谷氨酰胺0.2 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
9.所述增殖培养基优选为:ms+zt0.3 mg/l+6
‑
ba1.0 mg/l+naa0.05 mg/l+2,4
‑
d0.3 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
10.所述壮芽培养基优选为:ms+6
‑
ba1.0 mg/l+kt0.5mg/l + naa0.2mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
11.所述生根结块茎培养基优选为:1/2ms+naa1.0 mg/l+iaa1.0 mg/l+da
‑
6 0.2 mg/l+白糖35 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
12.所述培养基中,zt为玉米素,6
‑
ba为苄氨基嘌呤,kt为激动素,da
‑
6为胺鲜脂,2,4
‑
d为2,4
‑
二氯苯氧乙酸,tdz为噻重氮苯基脲,naa为a
‑
萘乙酸,iaa为吲哚
‑3‑
乙酸,试剂均为分析纯,水为超纯水。
13.所述培养基中植物生长调节剂不同种类和浓度组合,对多花黄精组培苗生长不同阶段产生不同效应。6
‑
ba有促进芽的形成和诱导愈伤组织发生的作用;zt能促进植物细胞分裂,阻止叶绿素和蛋白质降解,减慢呼吸作用,保持细胞活力等作用;2,4
‑
d具有促进多花黄精腋芽萌发作用;tdz可以促进植物芽的再生和繁殖,打破芽的休眠;谷氨酰胺具有促进细胞内蛋白质合成、促进细胞的生长和分化等作用;da
‑
6是一种高效的细胞分裂素,主要是促进作物生长,促进作物生根等功效;kt促进细胞分裂的作用外,还具有延缓离体叶片衰
mg/l+谷氨酰胺0.2 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(3)继代增殖培养:在超净工作台上,将步骤(2)中诱导出的无菌芽剪成带节间茎段,接入增殖培养基中培养30 天,茎段诱导出丛生芽中部分为单叶芽、部分为有茎叶的芽,增殖系数为4.9;所述增殖培养基为:ms+zt0.5 mg/l+2.0 mg/l+naa0.1 mg/l+2,4
‑
d0.5 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(4)壮芽培养:在超净工作台上,取出步骤(3)中增殖芽,切分成有2个芽的小丛生芽,接入壮芽培养基中培养30 天,单叶芽长成带茎叶的芽,芽一般壮,芽高为2~5 cm;所述壮芽培养基为:ms+6
‑
ba2.0 mg/l+kt1.0mg/l + naa0.5 mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(5)生根结块茎培养:将步骤(4)中得到带茎叶的丛生芽切分成单芽,接入生根结块茎培养基中培养60 天,获得有块茎的组培苗,块茎大小为1.0 cm,平均根数为17.2条;所述生根结块茎培养基为:1/2ms+naa2.0 mg/l+iaa2.0 mg/l+da
‑
6 0.5 mg/l+白糖35 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
19.实施例3:一种以多花黄精茎节培育组培苗的方法,包括以下步骤:(1)外植体取材及预处理:在晴天的上午剪幼嫩的茎芽,剪掉叶片,用洗衣粉水浸泡10 min,不时搅拌,再用流动清水冲洗20 min,滤干水滴,备用;(2)灭菌及初代诱导培养:在超净工作台上,将多花黄精茎剪成带节间1 cm长的茎段,再用0.1%升汞(hgcl2)溶液灭菌6 min,无菌水清洗5次,放到灭菌过的滤纸上吸干水分,剪去两头的旧伤口,接入初代诱导培养基上培养30 天,芽诱导率为95.80%;所述初代诱导培养基为:ms+6
‑
ba1.0mg/l+zt0.4mg/l + tdz0.3 mg/l +iaa0.05 mg/l+谷氨酰胺0.2 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(3)继代增殖培养:在超净工作台上,将步骤(2)中诱导出的无菌芽剪成带节间茎段,接入增殖培养基中培养30 天,茎段诱导出丛生芽中部分为单叶芽、部分为有茎叶的芽,增殖系数为5.9;所述增殖培养基为:ms+zt0.3 mg/l+6
‑
ba1.0 mg/l+naa0.05 mg/l+2,4
‑
d 0.3 mg/l +白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(4)壮芽培养:在超净工作台上,取出步骤(3)中增殖芽,切分成有2个芽的小丛生芽,接入壮芽培养基中培养30 天,单叶芽长成带茎叶的芽,芽壮,芽高为2~5 cm;所述壮芽培养基为:ms+6
‑
ba1.0 mg/l+kt0.5mg/l + naa0.2 mg/l+白糖30 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8;(5)生根结块茎培养:将步骤(4)中得到带茎叶的丛生芽切分成单芽,接入生根结块茎培养基中培养60 天,获得有块茎的组培苗,块茎大小为1.2 cm,平均根数为24.1条;所述生根结块茎培养基为:1/2ms+naa1.0 mg/l+iaa1.0 mg/l+da
‑
6 0.2 mg/l+白糖35 g/l+琼脂5 g/l,ph值为5.8。
20.实施例1~3所述步骤(2)至(5)的培养条件是:培养温度为25
±
1℃, 光照时间为12小时/天,光照强度为2000 lx。
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